plagas de arroz

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Pedro Saúl Castillo Carrillo TUMBES - PERÚ, ABRIL 2007 UNIVERSIDAD NACIONAL DE TUMBES INSECTOS Y ÁCAROS PLAGAS DEL CULTIVO DE ARROZ FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE SANIDAD VEGETAL Y PRODUCCIÓN PECUARIA

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Manual de Plagas de arroz, se proporcionan datos de morfología, biologia de la especie palga y los diferentes métodos de control para contrarestar sus daños.

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Page 1: Plagas de arroz

Pedro Saúl Castillo Carrillo

TUMBES - PERÚ, ABRIL 2007

UNIVERSIDAD NACIONAL DE TUMBES

INSECTOS Y ÁCAROS PLAGAS DELCULTIVO DE ARROZ

FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIASDEPARTAMENTO ACADÉMICO DE SANIDAD

VEGETAL Y PRODUCCIÓN PECUARIA

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Insectos y ácaros plagas del cultivo de arroz

El insecto de la portada corresponde a un adulto de la especie Rupela albina conocida como “mariposa blanca” o “novia del arroz”. Crédito: Miguel Garrido Rondoy, Universidad Nacional de Tumbes (UNT).

© Pedro Saúl Castillo CarrilloEmail: [email protected] edición: abril 2007Tiraje: 1000 ejemplares

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INSECTOS Y ÁCAROS PLAGAS DEL CULTIVO DE ARROZ

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image code: DHJ56690

Tesis para optar el

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Dr. Adán Alvarado BernuyRector

Ingº Auberto Hidalgo Mogollón M. Sc.Vicerrector Administrativo

Dr. César A. Mantilla AvalosVicerrector Académico

Ingº Carlos A. Deza Navarrete M. Sc.Decano de la Facultad de Ciencias Agrarias

Ingº Miguel A. Garrido Rondoy M. Sc.Jefe (e) Departamento Académico de Sanidad Vegetal y

Producción Pecuaria

UNIVERSIDAD NACIONAL DE TUMBES

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Bibliografía Bibliografía ALVA, M. P y L. CÉSPEDES. 1999. Biología de ácaro del arroz Shyzotetranychus

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Fig. 19.- Ácaro hialino del arroz (S. oryzae): (A) Daños, (B) Adulto y huevos (Créditos :CIAT).

BA

Biología.- Una hembra pone 30 a 50 huevos, los huevos son ovipositados en forma individual y quedan paralelos a la nervadura central bajo una telaraña. Los machos suelen permanecer bajo la telaraña en el envés de la hoja. La duración del ciclo de desarrollo según Alva y Céspedes (1999) para las condiciones de Tumbes es como se detalla a continuación:

Huevo ( Incubación) : 2-5 díasLarva : 1-2 díasNinfa : 2-3 días Total : 5-10 días.

Métodos de control:Cultural.Evitar tener campos sin agua.BiológicoSe reportan como agentes de control natural a ácaros de la Familia Phytoseidae (Pantoja, 1997).QuímicoSe recomienda la aplicación de acaricidas como Peropal 25 PM(azozyclotin) 400 g/ha, Magíster 10 EC(fenazaquin) al 0,05%, o de insecticidas acaricidas como Dynamec 1,8% EC(abamectina) a una dosis de 500 cc/ha, Hostathion 40 EC (triazophos) a razón de 1,5 L/ha.

A mis padres Pedro y MarcolinaA mi esposa Carmen IsabelA mis hijas Maryurit Elizabeth y Lina CatherineA mis hermanas María Isabel y Francisca A mis hermanos Ruperto, Feliciano, Gabriel y Carlos

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Ácaro hialino del arrozSchizotetranychus oryzae Rossi de Simons,1966

Ubicación taxonómicaOrden : AcarinaFamilia : Schyzotetranychidae

Distribución: Distribuido en la Costa nortePlantas hospederas: Arroz, malezas gramíneas (Echinocloa cruspavoni, E. crusgalli,Panicum y Paspalum), Pantoja, 1997. Daños: Los adultos y ninfas perforan las células de la lámina foliar para succionar su contenido. La continúa perforación y remoción de contenido celular se manifiesta inicialmente como puntos finos y blanquecinos (cloróticos). Estos puntos se convierten luego en estrías longitudinales amarillentas (clorosis) y en manchas irregulares de color blanquecino a verde claro(CIAT, 1982; Pantoja, 1997). Ecología: Alcanza su máximo daño en épocas secas.

Características morfológicas CIAT, 1982; Pantoja, 1997; Alva y Céspedes, 1999 reportan lo siguiente:

Huevo.- Es ligeramente esférico, achatado en uno de sus extremos de color blanco perla recién ovipositado, tornándose amarillo a medida que se acerca la eclosión. Larva.- Es de un color amarillo claro a verde, presenta tres pares de patas.Ninfa.- Presenta un color verdoso y presenta 4 pares de patas.Adulto.- De forma globosa a piriforme y puede medir hasta 0,8 mm de longitud (Fig.20).

Contenido

Introducción 01Gusano rojo o lombriz roja 03Mosca minadora del arroz 07Cogollero 12Falso medidor del arroz 16Gusanos enrolladores o gusanos cabezones 19Cigarrita marrón o sogata 22Queresa blanca móvil o queresa ceniza de cigarro 26Cañero 28

ovia del arroz 32Chinche de la panícula o chinche hediondo 35Ácaro hialino del arroz 38Bibliografía 40

o mosquilla

Mariposa blanca o n

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Huevo (Incubación) : 06 - 07 días Ninfa : 24 - 28 díasTotal : 30 - 35 días.

Métodos de control:

Cultural•Se recomienda eliminar plantas hospederas

•Sembrar dentro de las fechas establecidas.

BiológicoSe registra a Telenomus podissi y T. latifrons (Scelionidae) como parasitoides de huevos y a las moscas de la Familia Tachinidae Gymnochotia paulista y Beskia aelops como parasitoides de adultos. También se reportan aplicaciones del hongo entomopatógeno Metarhizium anisopliae (Pantoja, 1997).

QuímicoVásquez (1999) de acuerdo a un ensayo realizado recomienda aplicar Baytroid TM 525 SL (metamidofos + cyfluthrin) a una dosis de 0,75 L/ha y Tamarón 600 ( a 1 L/ha. También se recomienda la aplicación de Bulldock 025 EC(betacyflutrina) a una dosis de 0,2 L/ha.

metamidofos)

Biología.- Céspedes y Valladolid (1988) para las condiciones de Tumbes reportan lo siguiente:

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l arroz es uno de los cultivos más importantes de la Región de Tumbes, anualmente se cultivan 12 000 hectáreas, constituyéndose en una fuente importante de mano de obra y E

de ingresos económicos para muchas familias del sector rural.

Esta región del país, presenta condiciones ecológicas favorables para el cultivo de arroz, pero también son óptimas para el desarrollo de insectos plagas y enfermedades que afectan su normal crecimiento incidiendo sobre la producción final.

La identificación de los insectos plagas, el conocimiento de sus hábitos, del daño que ocasionan a la planta, de la edad del cultivo en que atacan, permite un manejo y control eficiente de los insectos y ácaros plagas para lograr un aumento en la producción del cultivo.

El propósito del presente manual es suministrar a los profesionales y agricultores una información básica que permita reconocer los principales insectos y ácaros que actúan como plagas del cultivo de arroz en la región. Se proporciona la ubicación taxonómica de cada una de las especies más frecuentes, una breve descripción sobre su distribución e importancia, así mismo se describe e ilustran los daños que producen, características morfológicas de los estados de desarrollo - huevo, larva, pupa y adulto-, algunos datos sobre su biología y comportamiento, se indican los métodos de control que tengan que utilizarse para atenuar los daños dentro de un plan de Manejo Integrado de Plagas.

INTRODUCCIÓN

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Ninfa.- Recién emergida es de color rojizo oscuro, la cabeza y el protórax presentan un color negro (Fig. 19B), miden de 7 a 8 mm.Adulto.-. Mide 8 mm, la cabeza es pequeña, prognata y triangular, es de un color negruzco acerado, violáceo o castaño y presenta una mancha amarilla en forma de v en la base del scutellum y una mancha también en el ápice de este. También se observa un pequeño punto amarillo en la parte apical del corium y cerca al margen costal (Fig. 19C). A cada lado del pronotum presentan una pequeña expansión similar a una espinita.

BA

C

Fig. 19.- Estados de desarrollo del chinche de la panícula

( (A) Huevo, (B) Ninfa, (C) Adulto (Créditos: CIAT).

O. poecilus):

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Chinche de la panícula o chinche hediondoOebalus poecilus (Dallas, 1851)

Ubicación taxonómicaOrden : Hemíptera Familia : Pentatomidae

Distribución: Distribuido en la Costa y selva peruana(Beingolea, 1984). Plantas hospederas: Malezas gramíneas (Echinocloa cruspavoni, E. crusgalli,Panicum y Paspalum)(Pantoja, 1997). Daños Los adultos y ninfas se alimentan de granos en formación causan vaneamiento y manchado del grano y disminución en los rendimientos. Hacen frecuentes picaduras en los granos y éstas permiten la entrada de microorganismos patógenos que manchan los granos (Fig. 18) su capacidad de ocasionar daño disminuye a medida que el grano madura y se endurece, ya que la proboscis o pico del insecto no tiene la capacidad para penetrar el grano duro. Los granos dentro de la cáscara que fueron picados quedan deformados o debilitados y se quiebran durante el proceso del pilado, bajando la calidad del grano(Pantoja, 1997).

Fig.18.- (A)Granos dañados por el chinche de la panícula (O. poecilus), (B) Granos sanos (Créditos: www.cnpaf.embrapa.br).

BA

Características morfológicas.- De acuerdo a lo reportado por CIAT(1982) y Céspedes y Valladolid ( 1988) se tiene lo siguiente:Huevo.- Tiene forma de barril y miden, en promedio, 1 mm de alto por 0,7 mm de diámetro. Recién ovipositado es de color verde y próximos a la eclosión se tornan de color rojo oscuro (Fig. 19A).

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Biología y comportamientoLos adultos durante el día vuelan erráticamente, en las noches son atraídos fuertemente por la luz de los poblados vecinos. La hembra oviposita masas de huevos sobre el haz de las hojas a las cuales cubre con escamas de color rosado, cada masa puede tener entre 40 y 232 huevos. Al eclosionar las larvas, éstas comienzan a descender del sitio de postura hacia la vaina de las hojas pero no se quedan alimentándose de ésta como es el caso de Diatraea, sino que inmediatamente penetran al tallo y comienzan a distribuirse a partir del primer entrenudo hacia arriba, siendo raro encontrar dos larvas en un mismo entrenudo y cuando esto sucede limitan su espacio tejiendo un tapón de seda muy fuerte que parece evita el canibalismo entre ellas, próximas a empupar tejen un fino cocón de seda pero previamente preparan un orificio de salida en forma elíptica protegido con hilos de seda que le será de utilidad para cuando emerga el adulto(CIAT, 1981; Castillo-Carrillo, 1988).En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Zarate (1996) para las condiciones de Tumbes, reporta lo siguiente:

Huevo (Incubación) : 7 - 9 díasLarval : 50 - 56 díasPupa : 11 - 12 díasTotal : 68 - 77 días.

Métodos de control.- Este insecto no necesita de control químico. Cabe manifestar que en condiciones de Tumbes los huevos de este insecto son parasitados casi en su totalidad por el Scelionidae Telenomus alecto. Además se ha observado la presencia de dos Ichneumonidae parasitoides de larvas (Beingolea, 1984; Castillo-Carrillo, 1988; Romero, 2001).

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Gusano rojo o lombriz rojaChironomus spp.

Ubicación taxonómicaOrden : DipteraFamilia : Chironomidae

Distribución e importancia. Estas especies están reportadas en todas las áreas arroceras de la costa y la selva del Perú. Inicialmente se reportó como plaga en los valles de Jequetepeque (La libertad) y Chancay (Lambayeque) en la campaña 1993 - 1994 (Amaya et al., 1997). En Tumbes estas especies siempre han estado presentes en los campos de arroz, pero sus daños pasaban desapercibidos, debido a que las larvas son predatadas por la fauna acuática existente en este cultivo. Sin embargo, esta fauna se ha visto reducida drásticamente como consecuencia de las aplicaciones indiscriminadas de plaguicidas que se realizan para el control de Hydrellia wirthi, la “mosca minadora del arroz” (Castillo-Carrillo y Cespedes, 1997).Daños.- Lo realizan las larvas al alimentarse de las raicillas del arroz dificultando su capacidad de prendimiento y de absorción de nutrientes, como consecuencia del ataque, las plantas muestran un amarillamiento (Amaya et al., 1997; Bravo, 2004).

Características morfológicas.- Se proporciona la siguiente descripción para los estados de desarrollo (Amaya et al., 1997; Bravo, 2004). Huevo.- Es ovalado, colocado dentro de un cordón gelatinoso, el cual se dobla y toda la postura toma forma de salchicha (Fig. 1A y 1B). Una hembra puede ovipositar o colocar hasta 1 200 huevos.Larva.- Es alargada con un pseudopodo en la parte ventral del tórax y uno en la parte caudal. Inicialmente es muy pequeña y de un color blanquecino, en un estado de desarrollo avanzado toma un color rojizo (Fig. 1C), debido a la presencia de hemoglobina disuelta en el plasma sanguíneo (Richards y Davies, 1984). Pupa.- Color marrón claro y del tipo libera (Fig.1D), la misma que tiene algún grado de movilidad. Adulto.- Se caracteriza por asemejarse a un zancudo, su cuerpo varía de color dependiendo de la especie, desde un verdoso hasta un color grisáceo (Fig. 1E), llegan a medir 3,12 mm, las alas son transparentes y las antenas son plumosas

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Larva.-Es de color blanco cremoso y se reconocen fácilmente por su cabeza pequeña y rojiza. El abdomen termina en punta, y tiene una línea dorsal longitudinal de color café (Fig. 17B). Al final de su desarrollo la larva mide 2,5 a 3,0 cm de longitud.Pupa.- La pupa completamente desarrollada miden en promedio 2,0 cm de longitud (Fig. 17C), presenta una coloración blanco cremoso se encuentra en un capullo de seda blanca Adulto.- La mariposa es de color blanco con el cuerpo cubierto de escamas planas, superpuestas (Fig. 17D). Miden hasta 3 cm.

Fig. 17.- Estado de desarrollo de la mariposa blanca (R. albina): (A) Huevo(Crédito: CIAT), (B) Larva(Crédito: CIAT), (C) Pupa(Crédito: CIAT),

(D) Adulto(Crédito: Miguel Garrido Rondoy).

BA

DC

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4

Fig.1. Estados de desarrollo del gusano rojo (Chironomus sp): (A) Masa de huevos en forma de salchicha (Crédito: Bayer.), (B)

Vista ampliada de huevos (Crédito: Manuel Bravo, Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo); (C) Larva; (D ) Pupa (Crédito:

Bayer), (E) Adulto.

A B

C D

E

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Biología y comportamiento.- Las hembras copulan inmediatamente después de haber emergido tornándose oviplenas, pueden colocar hasta 1 200 huevos cada una en un solo acto de postura sobre la superficie de cualquier ambiente acuático. La viabilidad de los huevos es alta hasta de 95 %. La longevidad de los adultos es de 1 a 5 días, ellos no se alimentan. El periodo de incubación del huevo es de 24 horas. Las larvas inicialmente viven en la superficie del agua alimentándose de plancton (plantonicas), luego se van al fondo del ambiente acuático donde se introducen en el barro (bentonicas), alimentándose de las raíces o de la materia orgánica en descomposición. Entre las raicillas tejen capullos de donde salen a alimentarse. Pasa por seis estadios larvales, en un período de 15 días y en su máximo desarrollo pueden medir 20 mm de longitud. Culminado su desarrollo larval pasan al estado de pupa doblandose en forma de C cuando está próximo a emerger el adulto, este estado dura 24 horas (Amaya et al., 1997; Bravo, 2004).

Amaya et al., (1997) proporcionan datos sobre la duración del ciclo de desarrollo de las siguientes especies

Especies Huevo Larva Pupa Total

Chironomus xanthus

Goeldichironomus cf. fluctuans

Dicrontendipes californicus

Tanytarsus hastatus

Polypedilum cf. griseopunctatum

Polypedilum sp.

1 15-20 1 17-22 1 15-21 1 17-23 1 20-25 1 22-27

1 15-20 1 17-22 1 15-19 1 17-21

Ecología (Condiciones que favorecen su desarrollo)•Pozas con láminas altas de agua•Uso indiscriminado de plaguicidas•Fertilización deficiente

Métodos de control:Cultural

•Nivelación adecuada de las pozas para un manejo de lámina de agua de riego

•Realizar drenajes periódicos debido a que el estado larval es muy sensible a la falta de humedad

•Buena fertilización, que incluya fósforo para el crecimiento de las raíces.

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Mariposa blanca o novia del arrozRupela albina Becker & Solis, 1990 (Rupela albinella Cramer, 1781)

Ubicación taxonómicaOrden : Lepidoptera Familia : Pyralidae

Distribución e importancia.- Está especie es oriunda de América Tropical y se distribuye en las regiones Neotropicales y Neartica, el Sur de los Estados Unidos de América (CIAT, 1981; Sarmiento et al. 1989). Este insecto en la región carece de importancia como plaga para el cultivo de arroz, pese a observarse grandes poblaciones de adultos en el mes de mayo cuando el cultivo está en plena floración o llenado del grano(Castillo-Carrillo, 1988). En los últimos años se viene observando que las poblaciones de esta especie se han reducido drásticamente debido a la forma como el agricultor viene destruyendo los residuos de cosecha del cultivo de arroz-uso de un implemento conocido como trompo para cortar los residuos de cosecha que quedaron después de la cosecha mecanizada, los que se dejan secar, para posteriormente quemarlos-.Daños.- El daño lo realizan las larvas que se alimentan del parénquima aerífero y paredes internas de los primeros entrenudos. Castillo-Carrillo (1988), al realizar la evaluación de 10 campos en los cuales se tomaron 100 tallos por campo en completo estado de maduración, encontró que no existía significación estadística entre un tallo sano y un tallo infestado aún cuando este tuviera hasta 5 larvas por tallo, a diferencia de Diatraea que destruye el tallo para completar su desarrollo, dando como resultado al final una panícula vana. Esto no sucede con un tallo atacado por Rupela debido a que al final de su desarrollo, el tallo presenta una panícula bien formada y que pueden pesar igual que una panícula de un tallo sano pese a tener una o más larvas en su interior próximas a empupar.Los adultos ocasionan problemas de lepidopterismo en los humanos que habitan en las poblaciones aledañas de los campos de cultivo provocadas por la abundancia de escamas que se desprenden de las mariposas.

Características morfológicas.- De acuerdo a lo reportado por CIAT( 1981); Castillo-Carrillo (1998) y Zarate (1996) se tiene lo siguiente:Huevo.-Es liso y ovalado, de 0,75 mm de largo y 0,55 de ancho de color verde amarillento y depositados en paquetes (Fig. 17A) cubiertos por escamas de color blanco que se desprenden del cuerpo de la hembra.

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EtológicoEmpleo de trampas amarillas y manteos para capturar los adultos.Biológico Las larvas y adultos de coleópteros acuáticos de la familia Dytiscidae se alimentan de las larvas del gusano rojo y las nayadas y adultos de las libélulas (Orden Odonata) se alimentan de larvas y adultos de este insecto plaga.QuímicoEn caso de que sea necesario se recomienda la utilización de cualquiera de los siguientes insecticidas: Calypso 480 SC (thiacloprid) (0,15-0,25 L/ha, Tracer (spinosad) a la dosis de 50 a 70 cc/ha, Regent (fipronil) a la dosis de 150-200 cc/ha y Baytroide(cyfluthrin) 100-250 cc/ha

Bajo condiciones de temperatura y humedad relativa no controladas para las condiciones de Piura, Castillo-Carrillo (1985) reporta lo siguiente:

Huevo (Incubación) : 5 - 9 díasLarva : 24 - 54 díasPupa : 7 -13 días Total : 36 - 76 días

El periodo de pre-oviposición fluctúa entre 2 - 3 días. El periodo de oviposición entre 2 - 3 días. En lo que concierne a capacidad reproductiva una hembra puede ovipositar entre 88 y 239 huevos. La longevidad en adultos machos tiene una duración de 4 - 9 días y de 3 - 8 días en hembras (Castillo-Carrillo, 1985).

Métodos de control:

Cultural •Levantar el nivel del agua en las pozas.•Quema de rastrojos con la finalidad de eliminar larvas y pupas.

LegalCumplir reglamentaciones de cultivos. RRMM Nº 3118 y 4051 sobre fechas de siembra, quemas de rastrojos, etc., dadas para Tumbes.

BiológicoEvitar el uso indiscriminado de insecticidas con la finalidad de preservar enemigos naturales: tales como Telenomus alecto, Trichogramma fasciatum, parasitoides de huevos (Fig. 16A) y Paratheresia claripalpis, y Iphiaulax sp. (Fig. 16B) como parasitoide de larvas (Beingolea, 1984; Castillo-Carrillo y Cespedes, 1997).

BA

Fig. 16 Parasitoides de cañero:(A) Trichogrmma fasciatum parasitando huevos(Crédito: CIAT), (B) Iphiaulax sp. parasitoide de larvas.

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Mosca minadora del arrozHydrellia wirthi Korytkowski, 1973

o mosquilla

Ubicación taxonómica Orden : DipteraFamilia : Ephydridae

Distribución.- El género de esta especie está distribuido en toda América (CIAT, 1982; Godfrey, 1999). En el Perú se encuentra en las áreas arroceras de Tumbes (Castillo-Carrillo y Céspedes, 1997), Piura, Lambayeque, La Libertad y San Martín (Bravo, 2004).Hospederos.- Además del arroz se le registra en las malezas Andropogon saccharoides, Cynodon dactylon, Paspalum conjugatum, P. lividum, P. paniculatum, P. vaginatum, Poligon interructus (Saavedra, 1973; Korytkowski, 1982; Bravo, 2004).Daños.- Al eclosionar el huevo, las larvas perforan la lámina foliar y se alimentan del tejido esponjoso, dejando en ella minas o galerías de color claro. Las minas miden inicialmente de 0,1 a 0,2 mm de ancho y cuando se agrupan o se fusionan, esa porción de la hoja finalmente se necrosifica y las hojas se quiebran (Fig.2). Las minas contienen una cámara de aire, al principio de un color verdoso, posteriormente de color amarillo, aunque con el tiempo pueden parecer de un color blanco, necrosificándose finalmente (Saavedra, 1973; Korytkwoski, 1982, Pantoja, 1997; Castillo-Carrillo et al., 2002).

Fig.2.- Daños en hojas ocasionadas por laslarvas de mosca minadora (H. wirthi).

hojas antes de ingresar al tallo donde hacen galerías llegando a destruirlo por completo, completado su desarrollo teje un fino cocón con hilos de seda donde empupa pero previamente hace un agujero por donde emergerá el adulto( Castillo-Carrillo, 1984).

Fig. 15.- Estados de desarrollo del cañero (D. saccharalis): (A) Huevo, (B) Larva,(C) Pupa, (D) Adulto (Créditos: CIAT).

A B

C D

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Fig. 14.- Daños producidos por cañero: (A) Corazón muerto, (B) Panícula vana.

A B

Larva.- Es de color blanco cremoso, la cápsula cefálica es de color marrón oscuro y en todo el cuerpo presenta tubérculos de color marrón claro, los cuales están provistos de 1 ó 2 setas (Fig. 15B). La larva en su último estadio llega a medir longitudinalmente 20 mm.Pupa.- Inicialmente presenta una coloración marrón claro adquiriendo un color marrón oscuro cuando está por emerger el adulto. La característica principal de la pupa son dos protuberancias en forma de cuernos cortos en la cabeza y varios en la parte posterior del abdomen en forma de dientes (Fig. 15C). El tamaño es de 1,10 a 1,40 cm en los machos y de 1,2 a 1,5 cm en las hembras. Adulto.- De color pajizo siendo en el macho más oscuro, en las alas anteriores presentan 2 franjas oblicuas. La hembra es de mayor tamaño, ambos sexos presentan palpos labiales muy desarrollados (Fig. 15D). La expansión alar es de 22,3 mm en el macho y de 23,3 mm en la hembra . Biología y comportamientoLos adultos son de hábitos nocturnos, durante el día permanecen en reposo sobre las plantas con sus alas plegadas a manera de un techo a dos aguas. Ovipositan sobre las hojas de arroz preferentemente en el haz, cerca de la nervadura central en grupos de 2 a 50 o más. Las larvas en sus dos primeros estadios se alimentan de tejido de la vaina de las

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El arquetipo de la planta parece ser un factor importante en la oviposición y en el daño ocasionado por las especies del género Hydrellia, así se puede indicar que las plantas con hojas erectas y de crecimiento rápido son menos ovipositadas que aquellas cuyas hojas son flácidas y se acercan más a la superficie del agua. Las variedades de crecimiento lento y con este tipo de hojas presentan un mayor daño si se siembran en áreas donde este insecto es endémico (Godfrey, 1999). Si la larva ataca la lámina foliar aún enrollada, produce áreas blancas en la hoja ya desplegada causando un enrollamiento de la parte apical. Si la larva ataca el punto de crecimiento de la plántula, puede retardar su desarrollo hasta provocarle la muerte. En infestaciones severas también pueden minar la vaina de las hojas (CIAT, 1982; Pantoja, 1997; Castillo-Carrillo et al., 2002).

Características morfológicas.- De acuerdo a lo descrito por Saavedra, 1973; Korytkwoski, 1982 y Gonzales, 2003; se puede indicar lo siguiente:Huevo.- Es de un color blanco perla de forma alargada, fusiforme llega a medir en promedio de 0,18 mm de ancho y 0,71 mm de largo (Fig. 3A). La superficie del corión presenta estrías longitudinales.Larva.- De tipo vermiforme de color blanco cremoso a blanco transparente, en el se puede apreciar el aparato buco faringeo de color negro (Fig.3B), llegan a medir en promedio 3,84 mm. Pupa.- De color marrón claro y presenta una forma oval y ahusada, deprimida en el extremo posterior (Fig. 3C), aunque el lugar donde está el espiráculo es más alargado, en promedio llega a medir 3,8 mm. Adulto.- Se caracteriza por ser de un color grisáceo, las alas son transparentes, las antenas presentan una arista plumosa. El tórax esta marcado con franjas longitudinales de color gris claro (Fig. 3D). Llegan

Biología y comportamiento.- Las plantas jóvenes son preferidas para la oviposición, las hembras ovipositan sus huevos blancos elongados en forma individual sobre la superficie de las hojas. Para ovipositar las moscas prefieren a las hojas que están flotando sobre el agua, debido a que los huevos requieren de una alta humedad relativa (80 - 100 %) para su eclosión y emergencia de las larvas. Las larvas minan las hojas entre el haz y el envés (Fig.4A), completado su desarrollo estas bajan a empupar entre la lígula y las aurículas (Fig.4B), (Pantoja, 1997; Castillo-Carrillo et al., 2002).

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Cañero Diatraea saccharalis (Fabricius, 1794)

Ubicación taxonómicaOrden : Lepidoptera Familia : Pyralidae

Distribución e importancia.- Es un insecto de amplia distribución en el continente y en nuestro país ataca a todas las gramíneas cultivadas entre las cuales, se encuentra el arroz (Villarreal, 1985). En Tumbes esta especie no representa un problema, debido a que sus poblaciones son reguladas por las mismas condiciones del cultivo, que es por riego y por la represión que ejercen sus enemigos naturales (Castillo-Carrillo y Céspedes, 1997).Daños.- Los daños de Diatraea son causados por las larvas; estas inicialmente se alimentan de las hojas tiernas y vainas de las hojas; después de la segunda muda penetran en el tallo, preferiblemente por la parte apical debido a que los huevos son depositados en las hojas superiores, lo cual determina que el movimiento de la larva sea, en la mayoría de los casos descendente . Dentro del tallo se localizan en los entrenudos superiores alimentándose del tejido esponjoso y van construyendo galerías longitudinales, algunas veces salen de estas galerías y nuevamente penetran por otro sitio en el tallo, o pueden pasar a otro tallo o a otra planta dejando en la base de las plantas residuos parecidos al aserrín . Debido a que Diatraea destruye el punto de crecimiento se producen los denominados "corazones muertos " o sea tallos jóvenes que se secan y mueren (Fig. 14A). Cuando estos insectos atacan plantas que inician la floración las hojas se secan, los granos no se forman, dando lugar a la aparición de panículas blancas vanas y erectas, (Fig.14B), las cuales, al ser haladas, se desprenden fácilmente(Villareal, 1985; CIAT, 1989; Castillo-Carrillo, 1998).

Características morfológicas.- Según el CIAT (1981), Pantoja, (1997) y Castillo-Carrillo (1998) se reportan las siguientes características: Huevo.- Es de forma ovalada y achatada colocados en grupos con los márgenes de unos sobre otros a manera de tejado de un techo(Fig. 15 A). Recién ovipositados son de un color blanco cremoso y a medida que transcurre el tiempo de incubación van tomando un color anaranjado y próximos a eclosionar presentan un color marrón claro apreciándose en el centro la futura cápsula cefálica de color marrón oscuro.

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Fig.3.- Estados de desarrollo de la mosca minadora (H. wirthi): (A)Huevo(Crédito: Jack Kelly Clark, University of California), (B) Larva,

(C ) Pupa (Crédito: Jack Kelly Clark, University of California), (D) Adulto.

Fig. 4.- (A) Larva de mosca minadora en el interior de una hoja de arroz (Crédito: Jack Kelly Clark, University of California, (B) Lugar donde

empupa la larva de mosca minadora.

A B

C D

A B

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En lo que corresponde al ciclo de desarrollo para Tumbes, Gonzáles (2003) reporta lo siguiente:

Huevo (Incubación) : 3 - 4 díasLarva : 8 - 12 díasPupa : 5 - 10 días Total : 16 - 26 días

Métodos de control: Cultural

•Nivelación adecuada de las pozas para mantener una lámina uniforme de agua de riego.

•Realizar drenajes periódicos para facilitar la vigorización de la plántula y la producción de macollos.

•Emplear una adecuada densidad de siembra.

EtológicoEmpleo de trampas amarillas fijas (Fig. 5), o realizar manteos.

Fig.5.- Modelo de trampa amarilla útil para la captura de adultos de gusano rojo y mosca minadora.

Duración del ciclo de desarrollo.- Según Beingolea (1971) tiene un ciclo de desarrollo de 64 días y una hembra puede producir entre 39 y 395 huevos, los cuales darán lugar a ninfas.

Métodos de control:

Cultural . Está orientado principalmente a :•Mantener limpios los canales, drenes y bordes del campo

como son el “gramalote” y la “caña brava”.•Eliminación de los rebrotes (cabrilla). •Extracción de plantas muy infestadas e incineración posterior.

Biológico Evitar aplicaciones masivas de insecticidas con el fin de preservar la acción de enemigos naturales como es el caso de la mosca Gitona brasiliensis de la Familia Drosophilidae, cuyas larvas son activas predatoras de los huevos almacenados en el ovisaco; también se puede reportar a larvas de Chrysopa spp. (Familia Chrysopidae), y larvas de los coccinélidos Scymnus spp. y Zagreus héxasticta (Beingolea, 1984).

Químico Las aplicaciones están dirigidas a controlar los focos existentes y evitar así una infestación que podría producirse bajo ciertas condiciones climáticas favorables al desarrollo del insecto. Se puede recomendar los siguientes insecticidas: Metasystox (oxidemeton) al 0,2 %, Baytroid TM(metamidofos+cyfluthrin) 0,2 a 0,3%, Lorsban 4E (clorpirifos) 0,2 al 0,3 %, Bulldock 025 EC(beta cyflutrina) al 0,1 %. Applaud 25 PM (buprofezim) 150 a 200 g/cilindro.

de plantas hospederas

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Biológico En Tumbes, se han encontrado dos especies del género Opius (Braconidae), aún no identificadas (Fig.6A y 6B); la especie Halticoptera cf. peruviana (Pteromalidae) (Fig. 6C) y una especie no identificada de la Familia Figitidae(Fig. 6D) (Castillo-Carrillo et al., 2002 y 2003).

Fig. 6.- Parasitoides larvo pupales de la mosca minadora (H. wirthi): (A) Opius sp.,(B) Opius sp., (C) Halticoptera cf. peruviana y (D) Especie da la familia Figitidae.

Químico De acuerdo a los ensayos realizados por Paredes (2002) y Suyon (2003), cuando se presentan infestaciones de importancia se recomienda la aplicación de cualquiera de los siguientes insecticidas.Baytroid TM (metamidophos+cyfluthrina) 0,3-0,5 L/ha, Calypso 480 SC (thiacloprid) 0, 15- 0, 25 L/ha, Regent (fipronil) 0,2 L/ha.

A B

C D

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Queresa blanca móvil ó queresa ceniza de cigarro Orthezia paragraminis Beingolea, 1971

Ubicación taxonómicaOrden : HomopteraFamilia : Delphacidae

Distribución e importancia.- Es una plaga secundaria del cultivo de arroz. Se le encuentra en toda la Costa del Perú (Beingolea, 1971). Plantas hospederas.- Gramíneas silvestres como “gramalote” (Panicum purpurescens) y “grama china” (Sorghum halepense), (Beingolea, 1971).Daños.-El daño es ocasionado por las ninfas y adultos que se encuentran en colonias, succionando la savia de los tallos, hojas e inclusive las panículas; produciendo fuerte debilitamiento en las plantas tornándose posteriormente amarillentas y muchas veces los granos quedan vanos. La infestación en los campos es en forma localizada (focos) y casi siempre se inicia en los bordos, avanzando posteriormente al centro de las pozas (Beingolea, 1984; Castillo-Carrillo, 1998).

Características morfológicas

La ninfa presenta proyecciones cerosas en el dorso del cuerpo al igual que el adulto (Fig. 13A). La hembra mide 2,5 mm de largo es de forma oval, ligeramente ahusada en la parte anterior, dorsalmente presenta placas cerosas de color blanco. Secreta un ovisaco en el que almacena sus huevos (Fig. 13B), este es mucho más largo que el cuerpo llegando a medir hasta 10 mm, es estriado dorsalmente. Los machos adultos son alados (Beingolea, 1971; Villarreal, 1985).

Fig. 13.- Queresa blanca móvil: (A) Ninfa, (B) Hembras con ovisaco.

A B

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CogolleroSpodoptera frugiperda (J.E.Smith) 1797

Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Noctuidae

Distribución e importancia.- Es una especie cosmopolita, ataca a muchos cultivos importantes y entre ellos a las gramíneas (arroz, maíz, sorgo, caña de azúcar), esta especie en el departamento de Tumbes, bajo condiciones de altas temperaturas adquieren cierta importancia (Castillo-Carrillo y Cespédes, 1997).Daños.- Los daños son más serios en almácigo sobre todo cuando se emplean altas densidades de semilla, donde las larvas comen vorazmente el follaje y los pequeños tallos. En siembra directa también pueden alcanzar niveles poblacionales elevados donde se comporta como “cortador de plantas” en especial en suelos desnivelados y faltos de agua; en plantas de mayor edad se comporta como “cogollero”. En arroces trasplantados generalmente el daño es menor (Peña,1981; Villarreal, 1985; Castillo-Carrillo y Céspedes, 1997).

Características morfológicas.- Se detallan a continuación las características reportadas por el CIAT, 1982 y Villarreal, 1985. Huevo.- Es de forma globular o esferoidal, con estrías radiales en su superficie, ovipositados en masas (Fig. 7A). Recién ovipositados son de color verde claro tornándose negros antes de la eclosión. Larva.- Es eruciforme ,de color verde o marrón oscuro, la cápsula cefálica y el escudo cervical son de color marrón oscuro, la sutura epicraneal está bien diferenciada. Presenta tres bandas longitudinales, una de color marrón claro en la parte dorsal, una a cada lado en la parte dorso lateral de color marrón oscuro, una sub espiracular a cada lado de color blanco cremoso (Fig. 7B). En la parte dorsal en cada segmento presenta 4 tubérculos de color negro de la cual se desprenden setas. La larva puede llegar a medir hasta 36 mm de longitud en su último estadio.Pupa.- Del tipo obtecta o momificada (Fig. 7C), de color marrón claro, miden de 2 a 2,5 cm de longitud.Adulto.- Es una polilla de 2 a 2,5 cm de expansión alar. El cuerpo es de color pardo, cubierto con setas finas. Existe dimorfismo sexual, los

Fig. 12.- Ninfa de cigarrita marrón parasitada por una especie de la familia Drynidae.

Químico •El empleo de insecticidas debe estar autorizado por especialistas y

usarse cuando se encuentre de 1 a 3 adultos por redada doble dependiendo del estado fenológico del cultivo.

•Entre los insecticidas que pueden emplearse están los siguientes: Confidor 350 SC (imidacloprid) a una dosis de 80 a 100 cc/ha, Calypso (thiacloprid) a una dosis de 250-300 cc/ha.

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machos son más pequeños y presentan las alas anteriores de color gris pajizo con una mancha plateada en forma de ocho (Fig. 7D), mientras que las hembras son de color marrón grisáceo (Fig.7E).

Fig. 7.- Estados de desarrollo del cogollero (S. frugiperda): (A) Huevo, (B) Larva (Crédito: ICI Plant Protection División), (C) Pupa (Crédito: Manuel Bravo, UPRG), (D) Adulto macho (Crédito: ICI Plant Protection División) y (E) Adulto hembra (Crédito: ICI Plant Protection

División).

Biología y comportamiento.- Los adultos son de hábitos nocturnos, las hembras ovipositan en el haz de las hojas superiores en masas o grupos de 132 a 265 huevos cubiertos con escamas del cuerpo de la polilla. En total una hembra puede poner entre 1 342 y 3 762 huevos (Azcarate y Villarreal, 1997). Las larvas se alimentan de las hojas llegando a devorarlas completamente cuando son tiernas. Para las condiciones de Piura (Azcarate y Villarreal, 1997), reportan para el ciclo de desarrollo lo siguiente:

B

C D E

A

Biología comportamiento.- Los huevos son colocados preferentemente en el haz de las hojas, sobre el tejido esponjoso de la nervadura central. Las hembras con su ovipositor abren una incisión en la parte elegida; la longitud de la incisión depende del número de huevos que vayan a depositar. El número de huevos ovipositados por una hembra fluctúa entre 20 a 310. Las ninfas generalmente se encuentran reunidas en pequeños grupos o colonias. Tanto las ninfas como los adultos son de vida sedentaria, se mueven con gran rapidez especialmente cuando sienten algún estímulo; cuando se encuentran alimentándose difícilmente se les desaloja de la planta

. Para condiciones de Tumbes Olaya (2002), reporta lo siguiente:

(CIAT, 1983; Castillo-Carrillo, 1998)

Huevo (Incubación) : 6 - 10 díasNinfa : 14 - 23 díasTotal : 20 - 33 días

Métodos de control :

Cultural•Εliminación de malezas hospederas, como es el caso de

Echinochloa colonum (grama de lefe).•Evitar siembra de variedades susceptibles tanto al vector

Tagosodes como a la enfermedad “hoja blanca”. •Evitar sembrar fuera de las fechas establecidas, para así poder

establecer un periodo de campo limpio.

Biológico•El empleo adecuado de insecticidas permitirá no ocasionar

desequilibrios en el ecosistema y preservar predadores y parásitoides.

•Para Tumbes se ha encontrado una especie de la familia Mymaridae como parasitoides de huevos y dos especies de la familia Drynidae como parasitoides de ninfas y adultos (Fig.12). T a m b i é n s e r e p o r t a a P a r a c e n t r o b i a acuminata(Trichogrammatidae), y Anagrus sp. (Mymaridae) como parasitoides de huevos; a Elenchus sp. (Stresiptera) como parasitoide de ninfas y adultos (Beingolea, 1989; CIAT, 1989; Pantoja,1997; Castillo-Carrillo y Céspedes,1997).

• Entre los predadores se puede indicar a Coleomegilla maculata (Coccinellidae), Zelus sp. (Reduviidae), Nabis sp. (Nabidae), Tythus sp. (Miridae) y arañas que son abundantes en los campos de arroz, sobre todo las pertenecientes a las familias Tetragnathidae, Oxyopidae; entre otras (Beingolea, 1984; CIAT, 1989, Castillo-Carrillo y Céspedes, 1997; Pantoja, 1997).

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Huevo (Incubación) : 2 - 4 díasLarva : 12 - 23 díasPupa : 8 - 15 días Total : 22 - 42 días

Cultural

•Utilización de densidades apropiadas de semilla con el fin de no

crear condiciones micro climáticas especiales que favorecerían el desarrollo del insecto.

•Aplicar una dosis adecuada de nitrógeno a los almácigos porque

dosis excesivas influyen para una mayor presencia del insecto.

•Manejo de agua en el almácigo, aplicando riego y secas alternadas,

esto contribuye negativamente al desarrollo del insecto debido a que necesitan temperatura y humedad relativa alta para desarrollarse óptimamente.

•Cuando se detecta la presencia de larvas, subir la lámina de agua en

las pozas de almácigos de manera que el gusano suba a la parte superior de las hojas y bajo esta circunstancia sean predatados fácilmente por las garzas.

Biológico

Como especies nativas de parasitoides se han recuperado de larvas de S. frugiperda a Euplectrus sp., Rogas vaughani, Campoletis curvicauda, Ophion sp., Gonia peruviana, Archytas marmoratus, Winthemia reliqua (Castillo-Carrillo y Huamacto, 1999). Entre los predadores se tiene a Zelus sp., Nabis punctipennis, Chrysoperla externa y Podisus connexivus.

Etológico

Utilizar trampas conteniendo agua más melaza de caña de azúcar (Fig. 8A), o bandejas de agua y un mechero a manera de una trampa de luz (Fig. 8B) .para atrapar adultos

INSECTOS Y ÁCAROS PLAGAS DEL CULTIVO DE ARROZ

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Ninfa.- Al nacer es de un color blanquecino destacándose los ojos de color rojo. La ninfa en su último estadio llega a medir 2,8 mm y presenta un color marrón claro, en la parte latero dorsal del cuerpo se observan dos bandas de color oscuro (Fig. 11B).Adulto.- El macho mide de 2 a 3 mm de largo, es de color castaño o negro y presenta una zona más oscura hacia el margen apical de las alas y una banda blanca en la cabeza. La hembra mide de 3 a 4 mm , de color marrón claro, alas transparentes apergaminadas y en el dorso del protórax presentan una banda longitudinal blanca (Fig. 11C) . Puede observarse también la presencia de adultos braquipteros, es decir individuos con alas cortas (Fig. 11D).

Fig.11.- Estados de desarrollo de la cigarrita marrón (T. orizicolus): (A) Huevo, (B) Ninfa, (C)Adulto,

(D) Hembra braquiptera (Créditos: CIAT).

A B

C D

Métodos de control:

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Fig. 8.- (A) Trampa conteniendo agua más melaza, (B) Bandeja de agua y mechero (Crédito: Manuel Bravo, UNPRG).

Químico

Cuando se requiera aplicar algún insecticida se puede emplear cualquiera de los que se indican a continuación: Dipterex 80 PS (trichlorfon) al 0,4 %, Lannate 90 PS (metomhyl) al 0,1 %, Lorsban 4E (clorpirifos) al 0,3%, Atabron (chlorfuazuron) al 0,25%, Xentari (Bacillus thurigiensis) al 0,2% o Larvin 375 F (thiodicarb) 0,4 L / ha.

A B

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Cigarrita marrón o sogataTagosodes orizicolus (Muir), (Sogatodes orizicola Muir)

Ubicación taxonómicaOrden : HomopteraFamilia : Delphacidae

Distribución e importancia.- La especie se distribuye desde el sur de los EE.UU., México, América Central, Brasil, Argentina, Venezuela, Surinam, El Caribe y África Occidental. En el país se encuentra en toda la Costa Norte y en nuestra Selva (CIAT, 1982; Villarreal, 1985). Esta especie en Tumbes es de mucha importancia para el cultivo de arroz, debido a que cada año se presenta con poblaciones más elevadas, provocadas por los desórdenes en el uso de plaguicidas que se realizan para el control de “mosca minadora” y “gusano rojo” durante la fase de instalación del cultivo (Castillo-Carrillo y Céspedes, 1997).

Daños.- Lo ocasionan las ninfas y adultos al picar y succionar la savia de hojas, tallos y yemas de las plantas de arroz. Indirectamente pueden provocar : a) Taponamiento de los haces conductores al incrustar sus posturas en las epidermis de la hoja en la nervadura central; provocando necrosificación o muerte de las zonas ovipositadas; b) Las excresiones de Tagosodes sirven para el desarrollo del hongo de la “fumagina”, daño que en Tumbes se ha podido observar cuando hay altas infestaciones y; c) es vector de la enfermedad virosica conocida como “hoja blanca” siendo este el daño más importante que provoca, pues, esta enfermedad puede ocasionar serias pérdidas a los agricultores debido a que esta produce muerte de macollos o esterilidad de los mismos dando como resultado una panícula totalmente vana (CIAT, 1982; Sarmiento et al., 1982; Villarreal,1985; Castillo-Carrillo y Céspedes,1997).

Características morfológicas.- De cuerdo al CIAT (1982), Villarreal (1985) y Olaya (2003 ) se puede indicar lo siguiente:

Huevo.- Tiene forma de un diminuto “platanito” (Fig. 11A), recién ovipositado es hialino, posteriormente, toma una coloración amarillenta, con dos puntos rojizos en la zona que corresponderá a la cabeza de la ninfa. La longitud del huevo es de 0, 7 mm.

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Falso medidor del arroz Mocis latipes (Guenée, 1852)

Ubicación taxonómicaOrden : LepidopteraFamilia : Noctuidae

Distribución e importancia.- Es una especie distribuida en México, El Caribe, América Central y del Sur. En el Perú se presenta atacando arroz, maíz, sorgo, caña de azúcar y otras gramíneas (Sarmiento et al., 1992). Esta especie en la región, bajo condiciones climáticas especiales como son las que se presentan durante el fenómeno de el Niño(Guevara y Castillo-Carrillo, 1998).Daños.- Las larvas se alimentan de las hojas de toda edad dejando intacta solo la nervadura central, se alimentan vorazmente y en consecuencia en altas infestaciones puede producir fuertes defoliaciones incluso en pleno proceso de floración (Guevara y Castillo-Carrillo, 1998). Características morfológicas.- De acuerdo a lo citado por Guevara y Castillo-Carrillo (1998) se indica lo siguiente:Huevo.- Presenta forma esferoidal, con estrías radiales en su superficie ligeramente achatado en sus extremos, mide 0,60 mm (Fig. 9A). Recién ovipositado es de color verde claro y próximo a la eclosión se pueden observar manchas pardas rojizas obscuras.Larva.- De tipo eruciforme llega a medir hasta 42 mm, las larvas son de color marrón claro amarillento, con bandas longitudinales estrechas y unidas que en el área dorsal son blancas y amarillas pálido. En las áreas subdorsales del cuerpo, son muy negras; y en las áreas supra y sub espiraculares de color amarillo oscuro, presenta dos pares de pseudopatas de color marrón claro. Cuando la larva se encorva para caminar aparecen en la parte dorsal de las articulaciones de los segmentos abdominales 1-2 y 2-3, unas manchas negras características (Fig. 9B). La cabeza presenta bandas longitudinales irregulares, de color blanco y marrón dispuestas alternativamente. Pupa.- Tipo momificada, de color marrón claro al comienzo posteriormente de color marrón oscuro, lo característico de las pupas es que están cubiertas de una sustancia cerosa de color blanco (Fig. 9C), miden de 14 a 18 mm de longitud.

adquiere cierta importancia

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Biología y comportamiento.- Los adultos son activos durante el día, las hembras depositan sus huevos sobre la punta de las hojas. Las larvas permanecen durante toda su vida en el estuche o tubo formado dentro del cual se alimenta, terminado su desarrollo empupan en el mismo estuche para lo cual fabrican un fino cocón de seda . Su ciclo de desarrollo dura de 25 a 35 días (Sarmiento et al., 1992; Castillo-Carrillo, 1998).

Métodos de control:

BiológicoLas larvas pueden ser predatadas en el estuche por arañas, chinches grandes como Zelus sp. o Nabis sp., Del mismo modo de las pupas que han sido parasitadas durante el estado larval, emergen avispas del género Brachymeria (Chalcididae) (Castillo-Carrillo, 1998)

MecánicoRecojo manual de larvas o aplastamiento de los estuches.

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Adulto.- E una polilla de color marrón oscuro a gris oscuro y presenta los márgenes externos de las alas anteriores de color más oscuro y con una fila de puntitos negros paralelos a dicho margen, a 1/3 del angulo humeral y junto al margen interno presentan un punto negro de 1 mm de diámetro (Fig. 9D). Llegan a medir 20 mm de longitud.

Fig.9.- Estados de desarrollo del falso medidor (M. latipes): (A) Huevo,(B) Larva, (C) Pupa, (D) Adulto (Crédito: Paula Kennedy).

A B

C D

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en la parte superior de la cabeza, la proboscis está libre y es ligeramente más larga que el cuerpo (Fig. 10B) y llega a medir 30 mm. Adulto.- Es una mariposa de tamaño mediano, con una expansión alar de 43 mm, mide 20 mm de longitud y presenta un color marrón oscuro. Las antenas son capitadas, las alas presentan escamas de color oliváceo con manchas blancas (Fig. 10C).

Fig. 10.- Gusano enrollador del arroz (Perichares philetes): (A) Larva (Crédito: Miguel Garrido,

UNT), (B) Pupa (Crédito: H. D. Janzen), (C)Adulto (Crédito: Robert Poole).

A B

C

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Gusanos enrolladores o gusanos cabezonesPerichares philetes(Gmelin,1790), Mnasilus allubita(Butler,1877),

Panoquina panoquinoides(Skinner, 1891), Panoquina ocola(Edwards,1863); Nyctelius nyctelius nyctelius (Latreille,1824), Hylephila phylaeus

basistigrata(Drury,1770) .

Ubicación taxonómicaOrden : LepidopteraFamilia : Hesperiidae Distribución. Se reporta que estas especies están distribuidas en toda la Costa del Perú y por lo tanto también en Tumbes (Sarmiento et al., 1992; Castillo-Carrillo, 1998).Hospederos.- Además del arroz se les registra en caña de azúcar maíz, sorgo, trigo, etc., y en plantas ornamentales (Sarmiento et al., 1992; Castillo-Carrillo, 1998).Daños.- Son ocasionados por la larva, la que primeramente enrosca las puntas de las hojas o une dos hojas vecinas con hilos de seda formando una especie de tubo, desde ahí saca su cuerpo para alimentarse de las hojas vecinas; los daños son fácilmente apreciables debido a que las puntas de las hojas aparecen cortadas (Sarmiento et al., 1992; Castillo-Carrillo, 1998).

Características morfológicas.- En este caso se describe solo la especie Perichares philetes y según Castillo-Carrillo (1998) se reporta lo siguiente:Huevo.- Recién ovipositado es de color blanco, hemisférico, próximo a la eclosión toman una coloración verde claro, mide 1 mm de diámetro.Larva.- De tipo eruciforme, presenta el cuerpo ensanchado en la región de las pseudopatas y estrecho en los extremos. La cabeza aparece prominente debido a que el primer segmento toráxico es muy estrecho. La cabeza presenta en el primer estadio un color negro luego se va tornando de un color verde claro al igual que el resto del cuerpo, presenta anillos amarillos en la parte intersegmental (Fig. 10A). Al alcanzar su máximo desarrollo, la larva tiene un tamaño de 40 mm. Pupa.- Presenta un color marrón verde claro al comienzo luego se van tornando de un color marrón claro, es característico observar un cuernito

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Los adultos son de hábitos nocturnos, las hembras ovipositan en el haz de las hojas inferiores en forma individual. En total una hembra puede poner entre 231 y 414 huevos. Las larvas empupan en las hojas para lo cual forma una especie de estuche. Para este insecto, Guevara y Castillo-Carrillo (1998) para las condiciones de Tumbes reportan lo siguiente:

Huevo (Incubación) : 2 - 3 díasLarva : 16 - 21 díasPupa : 9 - 11 días Total : 27 - 35 días

Métodos de control :

CulturalEliminación de gramíneas silvestres del cultivo por ser estas los hospederos primarios donde se inicia la infestación.

BiológicoEsta especie tiene un buen complejo de enemigos naturales - predadores, parasitoides y entomopatógenos- que regulan sus poblaciones.

QuímicoSolo cuando se presenten altas infestaciones se puede aplicar cualquiera de los siguientes insecticidas: Lannate 90 PS (methomyl) al 0,1%, Baytroid TM (metamidofos+cyflutrina) al 0,25%, o Atabron (chlorfuazuron) al 0,15% .