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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA CONCYT- SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA SENACYT- FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA FONACYT UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA INFORME FINAL DETERMINACION DE LA PRESENCIA DE Fasciola hepática EN REBAÑOS DE OVINOS EN LA SIERRA DE LOS CUCHUMATANES DEL DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO POR MEDIO DE LA TECNICA DE SEDIMENTACION AMS III PROYECTO FODECYT No. 039-2009 M.V. LIGIA MARIA REYES LOPEZ INVESTIGADOR PRINCIPAL Guatemala, abril del 2011

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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –CONCYT-

SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –SENACYT-

FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

INFORME FINAL

DETERMINACION DE LA PRESENCIA DE Fasciola hepática EN REBAÑOS DE

OVINOS EN LA SIERRA DE LOS CUCHUMATANES DEL DEPARTAMENTO DE

HUEHUETENANGO POR MEDIO DE LA TECNICA DE SEDIMENTACION AMS III

PROYECTO FODECYT No. 039-2009

M.V. LIGIA MARIA REYES LOPEZ

INVESTIGADOR PRINCIPAL

Guatemala, abril del 2011

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AGRADECIMIENTOS

La realización de este trabajo fue posible gracias al apoyo financiero del Fondo Nacional

de Ciencia y Tecnología –FONACYT-, otorgado por la Secretaria Nacional de Ciencia y

Tecnología –SENACYT- y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología -CONCYT-.

(FODECYT No. 039-2009).

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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

EQUIPO DE INVESTIGACION

Ligia María Reyes López

Medica Veterinaria

Investigadora Principal

Manuel Eduardo Rodríguez Zea

Médico Veterinario

Profesor titular VII, Departamento de Parasitología

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia

Investigador Asociado

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INDICE

RESUMEN 5

SUMMARY 6

PARTE I 7

1.1 INTRODUCCIÓN 7

1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 9

a) ANTECEDENTES 9

b) JUSTIFICACION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION 10

1.3 OBJETIVOS 12

a) GENERAL 12

b) ESPECÍFICO 12

1.4 METODOLOGIA 13

a) MATERIALES 13

1.5 METODOS 16

a) Comunidades a estudiar: 16

b) Determinación de la muestra: 16

c) Toma de muestras: 16

d) Procedimiento de laboratorio: 16

e) Análisis de datos: 17

PARTE II 18

2.1 MARCO TEORICO 18

a) Definición: 18

b) Clasificación taxonómica: Según Soulsby (1987) 18

c) Morfología: 18

d) Transmisión: 19

e) Localización: 19

f) Hospederos: 20

g) Ciclo biológico: 21

h) Epidemiología: 23

i) Importancia económica: 23

j) Distribución nacional: 23

k) Zoonosis: 24

l) Patogenia: 25

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m) Signos: 26

n) Lesiones: 27

o) Diagnóstico: 28

p) Tratamiento: 30

q) Control: 30

PARTE III 31

3.1 RESULTADOS 31

a) Muestreo: 31

b) Discusión: 32

PARTE IV 36

4.1 CONCLUSIONES 36

4.2 RECOMENDACIONES 37

4.3 BIBLIOGRAFÍA 38

4.4 ANEXOS 41

ANEXO 1: AREA DE TRABAJO 41

ANEXO 2: CHARLA CON LOS OVINOCULTORES MIEMBROS DE LAS COOPERATIVAS 42

ANEXO 3: REBAÑOS A MUESTREAR 43

ANEXO 4: TOMA DE MUESTRAS 44

ANEXO 5: RESULTADOS DE LABORATORIO 45

ANEXO 6: MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS

46

ANEXO 7: MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE

LA FASCIOLA DEL HÍGADO 55

ANEXO 8: PLAN DE MANEJO DE FASCIOLA HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN

EL DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO 63

PARTE V 69

5.1 INFORME FINANCIERO 69

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RESUMEN

El presente estudio fue realizado con la finalidad de determinar la presencia de

distomatosis, causada por el trematodo Fasciola hepatica, en rebaños de ovinos de la

Sierra de los Cuchumatanes del departamento de Huehuetenango, para lo cual se

tomaron muestras coprológicas y se procesaron a través de la técnica diagnóstica de

sedimentación AMS III, por ser una técnica eficaz para el diagnóstico de esta enfermedad.

Se recolectaron 100 muestras de ovinos de las cooperativas de Chabal y Climentoro,

completamente al azar, 45 ovinos pertenecían a la Cooperativa Unión Cuchumateca de

Chabal y 55 a la Cooperativa Joya hermosa de Climentoro, de estos 51 eran hembras y 49

eran machos, comprendidos entre 6 a 60 meses de edad y los resultados fueron

analizados por estadística descriptiva, determinando la proporción de animales positivos y

negativos, separados según el sexo y la edad en meses.

De los resultados obtenidos de las cooperativas se determinó un 32% de ovinos positivos,

de los cuales el 56% eran hembras y 44% machos.

Un 27% de los ovinos positivos pertenecen a la Cooperativa Unión Cuchumateca de

Chabal y 36% a la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro.

Los ovinos más afectados comprendieron las edades de 13 y 24 meses para ambas

cooperativas; sin embargo, también se encontró presencia de Fasciola hepatica en las

edades de 6 hasta los 49 meses.

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SUMMARY

This study was performed with the purpose of determining the presence of distomatosis,

caused by the trematode Fasciola hepatica in sheep flocks from the "Sierra de los

Cuchumatanes" in Huehuetenango’s department, for which coprological samples were

taken and were processed through the diagnosed technique of sedimentation AMS III, for

being an effective technique for the diagnosis of this disease.

Were collected 100 randomized samples of sheep, from cooperatives Climentoro and

Chabal, 45 sheep belonging to the Cooperative "Unión Cuchumateca de Chabal" and 55

from the Cooperative "Joya Hermosa de Climentoro", of these, 51 were female and 49

were males, ranging in 6 to 60 months of age, and the results were analyzed by descriptive

statistics, determining the proportion from positive and negative animals, separated by sex

and age in months.

From results of cooperatives was determined 32% from positive sheep, from which 56%

were female and 44% males.

27% from positive sheep belong to the Cooperative "Unión Cuchumateca de Chabal" and

36% to the Cooperative "Joya Hermosa de Climentoro".

Sheep most affected include the ages of 13 and 24 months for both cooperatives, also was

found the presence from Fasciola hepatica in the ages of 6 to 49 months.

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PARTE I

1.1 INTRODUCCIÓN

Fasciola hepatica es el parásito responsable de producir Distomatosis Hepática; esta es

una enfermedad parasitaria de distribución mundial, considerada como la enfermedad de

órganos cavitarios más importante en los animales domésticos. El parásito se localiza

principalmente en los canalículos biliares del hígado de su hospedero definitivo, entre los

que se pueden mencionar: bovinos, ovinos, caprinos, cerdos, equinos y el humano entre

otras especies. Para el desarrollo de este parásito se necesitan factores climatológicos

como alta presencia de humedad, temperaturas entre 100a 350C y topografías que

permitan el estancamiento de agua, para que se desarrolle su hospedero intermediario

(caracoles del género Lymnaea).

La explotación ovina en nuestro país presenta problemas de insuficiente disponibilidad de

pastos y agua en determinadas épocas del año, precarias vías de acceso, un casi

inexistente sistema de comercialización que responda a los intereses de los productores,

un bajo nivel de organización de los mismos con fines de producción y comercialización.

La oveja ha sido desplazada de las tierras fértiles hacia las zonas montañosas y

marginales del país, tendencia que se está empezando a revertir en los últimos años con

el incremento de la oveja de pelo en áreas de la costa sur y Peten.

El rebaño nacional está formado por los ovinos denominados “criollos”; animales muy

heterogéneos localizados en diferentes regiones y sometidos a variadas condiciones

ambientales y de manejo. Esta situación ha determinado a través del tiempo, la formación

de grupos que no llegan a constituir una raza definida, pero si un tipo particular, en el cual

es posible observar de forma consistente, ciertos caracteres fenotípicos y funcionales

constantes como resultado de la adaptación a las condiciones en que han sido explotados

durante siglos. La capacidad de adaptación y la rusticidad son sus principales virtudes, a

diferencia de las razas ovinas convencionales, que no las poseen en tal magnitud.

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Entre las razas introducidas con las que se ha logrado un mayor grado de cruzacmiento

del ovino criollo están la Corriedale, Merino y Dorset.

La Sierra de los Cuchumatanes del departamento de Huehuetenango, proporciona el

ambiente adecuado para que se cumpla el ciclo biológico de Fasciola hepatica por lo que

afecta a diversas especies animales. Además de ser una enfermedad zoonótica que

puede afectar a niños y adultos que habitan en áreas donde se encuentra presente el

parásito, provocando trastornos hepáticos y/o generales. Es importante mencionar que la

Fasciolasis o Distomatosis humana, ha sido reportada en Guatemala en el departamento

de Huehuetenango.

Actualmente entre las técnicas de sedimentación más efectivas para el diagnóstico de esta

enfermedad, se encuentra AMS III; este método se basa en la observación directa de los

huevos de Fasciola hepatica contenidos en muestras coprológicas además supera con

creces a las técnicas tradicionales como la de Dennis y colaboradores, formalina-

detergente, y otras para el diagnóstico de Distomatosis ovina.

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1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

a) ANTECEDENTES

La Fasciolosis hepática es una enfermedad zoonótica que ataca a humanos y animales

domésticos, provocando numerosas pérdidas, que afecta a gran cantidad de mamíferos

herbívoros u omnívoros que le sirven de hospederos definitivos; además se han reportado

21 especies de moluscos que pueden ser hospederos intermediarios, y el enquistamiento

de las metacercarias (fase infectiva de Fasciolosis hepática) se efectúa en hierbas,

hortalizas y agua. Contribuyen como situaciones ecológicas importantes la existencia de

pantanos, sistemas de riegos, manejo inadecuado de cultivo de hortalizas, pastizales, etc.

(Aguilar, 1997).

Los factores que predisponen la presencia de Fasciola hepática se presentan en la meseta

de la Sierra de los Cuchumatanes, entre ellos los más importantes son:

a) Presencia del caracol Lymnaea truncatula

b) Temperatura en los rangos de 10 a35 0C,

c) Humedad relativa entre 70 a 80%

d) Topografía plana que favorece el estancamiento del agua y desarrollo de los

caracoles,

e) Suelos con drenaje pobre o deficiente

f) Terrenos charcosos o anegados

g) Presencia de ríos con caudales menores de 50 m3/segundo,

h) Crianza conjunta de ovinos con bovinos. (Solórzano, 1999).

En Guatemala se ha reportado Fasciolosis hepática en los departamentos de Izabal, parte

sur de Peten, parte norte de Zacapa, Totonicapán, algunas partes de Chimaltenango,

parte norte de El Progreso, en las Verapaces, Huehuetenango, Quiche y Sololá. (OMS Y

FAO, 1979).

En nuestro país las enfermedades parasitarias en vacunos y ovinos presentan una alta

prevalencia en los departamentos de Huehuetenango, Quezaltenango y Petén. (Aguilar,

1988).

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La Fasciolosis hepática es una enfermedad que puede ser transmitida al humano y en

Guatemala desde 1960 se han reportado 25 casos de Fasciolosis humana, en áreas del

departamento de Huehuetenango; las personas afectadas oscilan entre 15 a 20 años,

siendo las mujeres las más afectadas con una relación 4:1. También se han reportado

casos humanos en El Salvador, Honduras y Nicaragua (Camargo, 2007).

La Distomatósis, Fasciolasis hepática o Duela del hígado está distribuida a nivel mundial.

(OMS y FAO, 1979); fue descubierta en 1379 por Jehan de Brie en el hígado de la oveja,

siendo el primer trematodo conocido. Leuckart y Tomas establecieron el ciclo evolutivo en

el año de 1883. (Aguilar, 1997).

La Fasciola hepática se encuentra en las áreas templadas del mundo. Su distribución en

América Latina es amplia, incluyendo reportes que señalan su presencia desde México,

pasando por Centroamérica, Costa Rica; y Suramérica: Colombia, Venezuela, Brasil,

Perú, Bolivia, Argentina, Chile, Ecuador, Uruguay y Paraguay. También se encuentra en

las islas caribeñas: Cuba, Puerto Rico, República Dominicana, Santa Lucía, Jamaica,

Guadalupe y Martinico. (FAO, 2007)

b) JUSTIFICACION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION

La mayor parte de la producción animal en Huehuetenango es realizada por campesinos,

de forma tradicional, estos productores no cuentan con asistencia técnica, ni apoyo

institucional que les diseñe un sistema sanitario para el diagnostico, prevención, control y

erradicación de las enfermedades que afectan a los animales domésticos, dando como

resultado en la actualidad pérdidas económicas para el productor y riesgo en la salud

pública de los habitantes de la región.

Huehuetenango es el departamento de Guatemala en donde se han reportado casos

humanos de Fasciolosis humana, y muy poco se ha investigado y menos dado

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seguimiento al comportamiento de la Fasciola hepática en el área de la Sierra de los

Cuchumatanes.

La Fasciolosis hepática se considera como la enfermedad parasitaria de órganos

cavitarios mas importante en los animales domésticos, los daños más notorios es la

muerte de los mismos y por su carácter zoonótica, pone en riesgo a los humanos del área

rural. El estado subclínico y crónico de la enfermedad se manifiesta en reducción de la

producción de carne, lana y leche, decomiso de órganos afectados, infecciones

secundarias por bacterias, interferencias con la fertilidad y gastos derivados de su

tratamiento. Para su identificación en este estado, es necesario realizar un muestreo y

análisis en un laboratorio con profesionales especialistas en su diagnostico.

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1.3 OBJETIVOS

a) GENERAL

Determinar y evaluar la presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la sierra

de los Cuchumatanes del Departamento de Huehuetenango por medio de la técnica de

Sedimentación AMS III.

b) ESPECÍFICO

a) Determinar y evaluar la presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la

Sierra de los Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango, por medio de

muestras coprológicas, utilizando la técnica de sedimentación AMS III.

b) Elaborar de manuales técnicos sobre Fasciola hepática en rebaños de ovinos en el

departamento de Huehuetenango.

c) Elaborar propuesta de un plan de manejo de Fasciola hepática en rebaños de

ovinos en el departamento de Huehuetenango.

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1.4 METODOLOGIA

a) MATERIALES

1.4.1.1 Localización geográfica del área de trabajo:

El Departamento de Huehuetenango se encuentra situado en la región VII o región Nor-

occidental, su cabecera departamental es Huehuetenango y limita al Norte y Oeste, con la

República de México; al Sur con los departamentos de San Marcos, Quetzaltenango y

Totonicapán; y al Este con el departamento de El Quiché; Se ubica en la latitud 15° 19' 14"

y longitud 91° 28' 13". Cuenta con una extensión territorial de 7,403 kilómetros cuadrados.

La cabecera departamental se encuentra a una altura de 1,901.64 metros sobre el nivel

del mar, pero su topografía es en extremo variada, con montañas y cimas que exceden de

3,000 metros de elevación y tierras bajas que descienden hasta unos 300 metros. La

climatología es forzosamente variada, también en relación con la elevación y sinuosidades

del terreno.

Esta cabecera se encuentra a una distancia de 269 kilómetros aproximadamente, de la

ciudad capital.

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La meseta de los Cuchumatanes dista aproximadamente 20 Km. de la cabecera

departamental. El terreno es montañoso y en el se encuentran las más altas cumbres del

sistema geográfico del departamento de Huehuetenango. (Guzmán, 2005)

Según de la Cruz (1982) el área pertenece a la zona de vida Bosque Húmedo Montano

Sub-tropical. Se reporta una temperatura máxima de 27.7ºC,

temperatura mínima de 10.9ºC, con una precipitación de 172.2 mm.

De los departamentos del altiplano occidental, es Huehuetenango el que cuenta con una

mayor población ovina, seguido por San Marcos y Quiché, en el área de la meseta

250,000 cabezas ovinas. (Guzmán, 2005)

1.4.1.2 Recursos biológicos: Ovinos del área de estudio.

Muestras coprológicas de ovinos del área de estudio.

1.4.1.3 Recursos de laboratorio: Medio AMS

Agua

Gasas

Tubos para centrifugar de 20-25 ml de capacidad

Centrifugadora

Éter

Láminas porta y cubre objetos

Pipetas

Microscopio

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1.4.1.4 Recursos humanos: Investigador principal:

M.V. Ligia María Reyes Lopez

Investigador asociado:

M.V. Manuel Eduardo Rodríguez Zea

1.4.1.5 Recursos de campo: Vehículo

Hojas de registro

Bolsas plásticas de una libra

Masking tape

Marcador permanente

Hielera de 5 litros de capacidad

Hielo

Botas de hule

Overol

1.4.1.6 Centro de referencia: Laboratorio de Parasitología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, USAC.

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1.5 METODOS

a) Comunidades a estudiar:

Para realizar el estudio se contó con el apoyo de las Cooperativas Unión Cuchumateca de

Chabal y Joya Hermosa de Climentoro de la Sierra de los Cuchumatanes.

b) Determinación de la muestra:

Se muestrearon por conveniencia 100 ovinos completamente al azar, para lo cual se

contó con acceso a los listados de los cooperativistas que estuvieron anuentes a participar

en el estudio, donde se ubicó geográficamente el lugar de la explotación y número de

animales existentes, procediéndose a tomar muestras de heces hasta completar los 100

ovinos.

c) Toma de muestras:

Las muestras coprológicas se tomaron directamente de los ovinos del área de estudio, en

bolsas plásticas identificadas, las cuales fueron transportadas en hielera al laboratorio de

Parasitología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, para ser procesadas por

el método de sedimentación AMS III.

d) Procedimiento de laboratorio:

AMS III es una técnica de sedimentación, originalmente desarrollada para la detección de

huevos de Schistosoma y huevos de otros trematodos, la cual se describe a continuación:

1.5.4.1 Preparación: Preparar medio AMS de la siguiente manera:

Solución A: Disolver 45 ml de HCl al 28 % en 55 ml de agua.

Solución B: Disolver 9.6 g de Na2SO4 en 100 ml de agua.

Mezclar solución A con la solución B en partes iguales.

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1.5.4.2 Procedimiento: Colocar 0.5g de muestra fecal, tomando de varias porciones de las heces,

en un tubo pequeño que contenga una pequeña cantidad de agua y agitar

vigorosamente.

Adicionar agua para incrementar el volumen a 15 ml y filtrar la suspensión

fecal a través de una gasa en un tubo apropiado para centrifugación

(capacidad de 20 a 25 ml).

Centrifugar a 2,000 r.p.m. por un minuto.

Decantar el sobrenadante.

Agregar de 7 a 10 ml de medio AMS, 2 a 3 gotas de Tween 80 y 3 a 5 ml

de éter al sedimento. Después agitar a mano el tubo con un tapón

apretado vigorosamente por 20 a 30 segundos.

Centrifugar a 2,000 r.p.m. durante 1 a 2 minutos.

Separar la capa de espuma flotante de la pared del tubo con un aplicador.

Decantar el sobrenadante con la capa de espuma y limpiar la superficie

interior del tubo.

Colocar el sedimento en una lamina limpia ya sea inclinando el tubo o

aspirando el sedimento con una pipeta larga y descargar sobre una

lamina. Colocar un cubreobjetos y examinar microscópicamente.

e) Análisis de datos:

Los resultados obtenidos se analizaron por medio de estadística descriptiva en donde se

determinó el número de animales positivos y negativos, separados por sexo y edad en

meses. La información obtenida se presenta en cuadros y gráficas. (Ver anexos y

apéndices)

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PARTE II

2.1 MARCO TEORICO

a) Definición:

La Fasciola hepatica es un trematodo que provoca una enfermedad hepática llamada

Fasciolasis o Distomatosis con frecuencia de carácter crónica y acompañada de trastornos

nutritivos. (Cordero, 1999)

b) Clasificación taxonómica: Según Soulsby (1987)

PHYLUM: Platyhelmintes

CLASE: Trematoda

SUB-CLASE: Digenea

ORDEN: Prosostomata

SUB-ORDEN: Distomata

FAMILIA: Fasciolidae

GENERO: Fasciola

ESPECIE: Fasciola hepatica

c) Morfología:

Trematodo hermafrodita de forma foliácea. En estado adulto mide de 18 a 50 por 4 a 14

mm; el cuerpo es aplanado dorsoventralmente. Es de color café-rosa grisáceo en estado

fresco y gris cuando se conserva en formaldehído. (Quiroz, 1991) La parte anterior está

provista de una prolongación cefálica de forma cónica de 3 a 4 mm de longitud, que hacia

atrás se ensancha, formando unos hombros, siguiendo por el cuerpo propiamente dicho,

para terminar en una parte roma. El tegumento está cubierto por espinas afiladas dirigidas

hacia atrás. La ventosa bucal es terminal, de 1 mm aproximadamente y, la ventosa ventral

esta situada a la altura de los hombros y tiene un tamaño similar. (Borchet, 1975)

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Los huevos miden de 130 a 150 por 63 a 30 micras, son operculados, su cubierta es

relativamente delgada teñida por los pigmentos biliares en tonos amarillos hasta

ligeramente pardos. (Solórzano, 1999)

d) Transmisión:

Su transmisión es exclusivamente por la ingestión de metacercarias presentes en plantas

silvestres que crecen en terrenos húmedos, y las que se encuentran flotando en el agua

removida por el pisoteo de los animales. (Solórzano, 1999)

También es posible la infestación por la ingestión de caracoles vivos o muertos, que

contengan cercarias maduras o que estén externamente adheridas a ellos, el contagio

tiene lugar por la ingestión de forrajes procedentes de prados infestados. (Borchet, 1975)

También existen datos de infestaciones intrauterinas en la oveja, caballo y el hombre. Se

cree que la fasciola joven, perfora la pared intestinal, penetra de modo inmediato en el

útero, a partir de la cavidad peritoneal. (Borchet, 1975)

e) Localización:

El parasito adulto se localiza en los canalículos biliares de los hígados de sus hospederos

definitivos; los estados larvarios pueden migrar a través del parénquima hepático y la

vesícula biliar.

Ocasionalmente existe localización ectópica en nódulos linfáticos, peritoneo, páncreas,

musculatura, bazo, pulmones, piel y útero. (Aguilar, 1997; Solórzano, 1999)

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f) Hospederos:

2.1.6.1 Hospedero intermediario: Para entrar a su hospedero definitivo se requiere el desarrollo de su fase infectiva

(metacercaria), esto se logra pasando por varias fases de cambios y crecimiento, en

donde necesita de un hospedero intermediario, (caracoles del género Lymnaea). Y el

animal se infesta al consumir pasto o agua contaminados con las metacercarias.

(Solórzano, 1999)

Se han citado numerosos moluscos hospedadores de Fasciola hepatica, las especies que

se que se citan a continuación son las que se consideran más importantes en la

transmisión de Fasciola hepatica: Lymnaea truncatula es el hospedero intermediario más

importante y de mayor propagación en Europa, América, Asia y África. En Norteamérica, el

hospedador intermediario más importante es Lymnaea bulimoides, y en Australia, L.

tomentosa. Otras especies relacionadas son: L. viator y L. diafena en Sudamérica; L.

collumella en América Central, Norteamérica, Australia y Nueva Zelanda; y L. humilis en

Norteamérica; en Uruguay L. viatrix y L. collumella.

Estos moluscos de agua dulce son hospederos intermediarios obligatorios de Fasciola

hepatica. (Solórzano 1999)

2.1.6.2 Hospedero definitivo: Como hospederos definitivos de la Fasciola hepatica se pueden mencionar los siguientes:

Porcinos, caninos, felinos: éstos son los hospederos más resistentes ya que

en ellos no necesariamente se desarrolla el parasito.

Equinos, Bovinos y hombre: hospederos susceptibles a la enfermedad.

Lagomorfos, Ovinos y Caprinos: hospederos susceptibles, de mayor

patogenicidad. (Fiebiger, 1942)

Otras especies mencionadas como hospedadores definitivos son venados, rata, canguro,

elefante y ardilla. (Solórzano, 1999)

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21

g) Ciclo biológico:

Los hospedadores infectados por Fasciola hepatica eliminan huevos del parásito al

ambiente. Una fasciola adulta pone entre dos y cinco mil huevos al día que, desde la

vesícula biliar, pasan al intestino mezclados con la bilis y salen al exterior con las heces. Si

existen condiciones favorables como la presencia de agua y temperatura ambiental de 10

a 35 0C, en el interior del huevo se desarrolla una larva, móvil gracias a su ectodermo

ciliado y con dos características manchas oculares oscuras, llamada miracidio. (Cordero,

1999; Solórzano, 1999)

La eclosión del miracidio depende de la luz, su actividad y la hipertonía del medio interno

del huevo, lo que presiona el opérculo que se abre y permite su salida al exterior. La vida

del miracidio depende de sus reservas energéticas, debiendo encontrar un molusco

hospedador adecuado antes de 24 horas.

Los miracidios pierden los cilios cuando penetran en el molusco y se transforman en

esporocistos jóvenes. (Cordero, 1999)

Los esporocistos constituyen el primer estadio larvario dentro del hospedador

intermediario y se encuentran en la región periesofágica del caracol. A los 15 días ya

existe una generación de redias, el segundo estadio larvario intramolusco, diferenciadas

de las masas germinales de células del esporocisto y que se alimentan de los tejidos del

hepatopáncreas del Limnaea. Si las condiciones ambientales y nutritivas para los

caracoles son desfavorables puede formarse una segunda generación de redias, estas

dan lugar a las cercarias. (Cordero, 1999)

Las cercarias emitidas por los caracoles se enquistan sobre hierbas y plantas acuáticas,

aunque aproximadamente un 10% lo pueden hacer también en el agua, pierden la cola y

se rodean de una cubierta resistente. Esta fase, que se denomina metacercaria, es la fase

infectiva para los hospedadores definitivos. La infección de los rumiantes tiene lugar

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durante el pastoreo, aunque también es posible que ocurra en estabulación, mediante el

agua de bebida o al administrar henos y ensilados contaminados. (Cordero, 1999)

El desenquistamiento de las metacercarias ocurre en el rumen donde las jóvenes duelas

atraviesan la pared intestinal, pasan a la cavidad peritoneal y desde allí alcanzan el

hígado. Durante algo menos de dos meses, el parásito emigra por el parénquima hepático

asentándose definitivamente en los conductos biliares a partir de los 40 días

aproximadamente, donde alcanzan la madurez sexual. Los primeros huevos aparecen en

las heces del hospedador a partir de 55-56 días desde la ingestión de las metacercarias.

Los huevos salen al exterior por medio de las heces del animal infectado donde

contaminan, pasturas agua y suelo, iniciando nuevamente el ciclo. (Cordero, 1999;

Soulsby, 1987)

Ciclo parasitario de Fasciola hepatica:

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h) Epidemiología:

Factores que predisponen a la presencia de Fasciola hepática:

Presencia de caracoles del género: Lymnaea.

Temperatura: de 10 a 35 0C

Humedad relativa: 70 a 80 %

Topografía: terrenos que favorecen el desarrollo de los caracoles, por el

estancamiento de agua o suelos con drenaje pobre o deficiente, terrenos

anegados, presencia de ríos con velocidades menores de 50 m/seg.

Crianza conjunta de ovinos con bovinos. (Soulsby, 1987)

Contribuyen como situaciones ecológicas importantes: existencia de pantanos, sistema de

riegos, cultivos inadecuados de hortalizas, pastizales, etc. (Aguilar, 1997)

i) Importancia económica:

La distomatosis hepática se considera como la enfermedad hepática más importante en

los animales domésticos, los daños más notorios se producen por muerte de los animales.

El estado subclínico y crónico de la enfermedad se manifiesta en reducción de la

producción de carne, lana y leche, decomiso de órganos afectados, infecciones

secundarias por bacterias, interferencias con la fertilidad y gastos derivados de su

tratamiento. (Solórzano, 1999) Afecta a ovinos y caprinos de manera crónica, su

longevidad es hasta de 5 años, además de ser una enfermedad transmisible al humano.

(Aguilar, 1997; Manual Merck de Veterinaria, 2000)

j) Distribución nacional:

En Guatemala el parasitismo vacuno y ovino es muy frecuente en los departamentos de

Huehuetenango, Quetzaltenango y Petén. (Aguilar, 1997)

En ovinos de los municipios de Paraxquim y Cumbre de Alaska del departamento de

Sololá se determinó una prevalencia epidemiológica del 86.86% para Fasciolasis hepática.

(Castillo, 1982) Un 38.9% en ovinos de los municipios de Chiantla, Todos Santos, San

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Juan Ixcoy, San Pedro Solóma y Santa Eulalia en el departamento de Huehuetenango.

(Maldonado, 1969) En el departamento de Chimaltenango se determinó una prevalencia

de 34.7%. (Escobar, 1974) Diagnosticados con la técnica de sedimentación tradicional de

Dennis y colaboradores. Y un 85% en el municipio de Chiantla, del departamento de

Huehuetenango con la técnica de sedimentación AMS III.

k) Zoonosis:

En el hombre al igual que en los animales las fasciolas adultas viven en los conductos

biliares y en la vesícula biliar, su metabolismo es anaerobio y se nutren de sangre y de las

secreciones biliares. El parásito adulto puede sobrevivir in vitro durante 12 días a 37 0C.

(Aguilar, 1997)

La infección suele ir asociada al consumo de berros silvestres crudos (Naturtium officinale)

y otras plantas que crecen en terrenos húmedos, utilizadas como alimento. En algunos

casos con presencia de moluscos infectados se reconoce una infección transmitida por el

agua. (Miyazaki, 1991)

La mayor parte de información sobre infección humana concierne a casos únicos o a un

número muy reducido de pacientes, provocando un ¨Síndrome Eosinofílico Febril¨. Sin

embargo, en determinadas condiciones, la infestación puede producirse en focos de tipo

endémico y afectar a grupos mayores de personas. (OMS y FAO, 1979)

La infección puede ser asintomática, pero a veces hay síntomas de trastornos del hígado o

generales. (Fiebiger, 1942)

2.1.11.1 Distribución de Fasciolasis humana en Guatemala:

En Guatemala desde 1,960 se han reportado 25 casos de fasciolasis humana, en áreas

del departamento de Huehuetenango, las personas afectadas oscilan entre 15 a 20 años,

siendo las mujeres las más afectadas con una relación de 4:1. (Camargo, 2007) en 1992

Flamenco M., F.M. reporto una prevalencia de 3.14% de distomatosis hepática en niños de

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educación primaria en las aldeas de la meseta central de los Cuchumatanes, en el

departamento de Huehuetenango.

l) Patogenia:

El desenquistamiento de las Metacercarias tiene lugar en dos fases. La primera o de

activación acontece en el rúmen y es iniciada por una alta concentración de dióxido de

carbono, ambiente reductor y temperatura de 39 0C, la segunda ocurre en el intestino

delgado, por debajo de la desembocadura del conducto colédoco y es desencadenada

por la bilis y por el propio parásito. Tras el desenquistamiento, las jóvenes duelas

atraviesan la pared intestinal, pasan a la cavidad peritoneal y desde allí alcanzan el

hígado. A las 90 horas comienza la penetración de la capsula de Glisson; en este

momento, las fasciolas tienen forma lanceolada y miden 1-2 mm. Aproximadamente

durante dos meses, el parásito emigra por el parénquima hepático localizándose

definitivamente en los conductos biliares a partir de los 40 días, donde alcanzan la

madurez sexual. (Solórzano, 1999)

Las fasciolas jóvenes también pueden debilitar y perforar la capsula hepática en su

migración, provocando una peritonítis. Las fasciolas situadas en los conductos biliares

actúan sobre su pared mecánicamente por medio de su revestimiento espinoso,

provocando una intensa acción irritativa, pero principalmente los productos metabólicos y

secreciones producen inflamaciones crónicas de las vías biliares y por la conducción

linfática de productos irritantes, se produce una cirrosis hepática con proliferaciones en los

conductos biliares. El período prepatente es de 55 a 60 días. (Solórzano, 1999)

Las formas emigrantes que alcanzan las venas hepáticas, pasan a la circulación pulmonar,

y alcanzan diversos órganos como ganglios linfáticos, páncreas, musculatura, pulmón,

bazo, peritoneo, piel y útero como fasciolas erráticas. Incluso llegan a la placenta de la

cabra y vaca, lo que puede dar lugar a una infección trasplacentaria. No obstante los

parásitos son encapsulados y mueren en todos estos órganos formando nódulos

parasitarios. (Borchert, 1975) Fundamentalmente esto puede ocurrir en los hospedadores

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menos específicos o como consecuencia de infecciones con elevada intensidad

parasitaria. (Solórzano, 1997)

Las infecciones bacterianas secundarias asociadas a esta enfermedad están relacionadas

comúnmente con bacterias Clostridiales y Salmonellas. (Borchert, 1975; Manual Merck de

Veterinaria, 2000)

m) Signos:

La fasciolosis puede presentar 3 formas clínicas: aguda, subaguda y crónica, cuya

aparición está relacionada con la época del año, la disponibilidad de metacercarias en el

pasto y el número de metacercarias ingeridas. Esta clasificación se basa principalmente

en lo hallazgos de necropsia y depende del número de parásitos que se encuentran en el

hígado y su estado de desarrollo. (Cordero, 1999)

Se presenta de forma aguda con infestaciones alrededor de las 1,800-2,500 fasciolas,

afecta sobre todo a los animales jóvenes, expuestos por primera vez al parásito, es de

curso corto de 1-2 días. Se origina por la ingestión, casi simultánea, de un millar de

metacercarias. (Cordero, 1999; Manual Merck de Veterinaria, 2000)

Como resultado del trauma producido por el gran número de vermes, los ovinos afectados

muestran un cuadro de anemia hemorrágica aguda de tipo normocítico y normocrómico.

La evolución de la anemia puede ser tan rápida que es posible observar muertes

repentinas durante el período de prepatencia, debido a la enorme pérdida de sangre y el

fallo de la función hepática. La sintomatología, cuando se presenta, se caracteriza por

debilidad, palidez de las mucosas, taquipnea o evidente disnea, cuando se obliga al

animal a moverse y, en algunos casos hepatomegalia palpable, con dolor abdominal y

ascitis. (Cordero, 1999)

La forma subaguda se presenta con infestaciones alrededor de las 1,500 fasciolas, donde

se observa pérdida de peso, letargo, edema submandibular, su curso es de 1-2 semanas.

(Cordero, 1999) Se debe a la ingestión de un número elevado de metacercarias durante

un período de tiempo suficientemente largo como para no provocar un proceso agudo. Las

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ovejas afectadas pierden peso durante una a dos semanas antes de la aparición de los

signos y se muestran letárgicas e incapaces de mantenerse con el resto del rebaño. En

este estado, la palidez de las mucosas es muy manifiesta y muchas de las ovejas

afectadas presentan dolor a la palpación anterior del abdomen, aunque solo un pequeño

número presentan hepatomegalia palpable. Algunos animales pueden mostrar edema

submandibular y ascitis. Gradualmente, se desarrolla anemia hipocrómica y macrocítica.

(Cordero, 1999)

La forma crónica se presenta con infestaciones alrededor de las 500 fasciolas, en donde

se observa anemia, pérdida de peso, ascitis, edema submandibular, la sobrevivencia es

alta pero siempre se reportan casos de muerte. (Cordero, 1999) Es la forma clínica más

frecuente en la oveja, se ha comprobado que, en muchos pastos y durante períodos de

tiempo prolongados, es habitual la ingestión de cantidades inferiores de 10 metacercarias

al día. El síntoma más aparente es la pérdida de peso, acompañada por una anemia

hemorrágica crónica e hipoalbuminemia, palidez de las mucosas y suelen presentar

edema alrededor de los párpados, ascitis y edema submandibular, pueden sobrevivir

durante varias semanas e incluso meses, la lana se torna quebradiza y seca, la diarrea

alterna con el estreñimiento, hepatomegalia, generalmente sin que haya ictericia, la leche

es acuosa y las ovejas, de modo especial los corderos lactantes, en ciertas circunstancias

mueren. (Borchert, 1975; Cordero, 1999)

n) Lesiones:

La Fasciola hepatica produce una hepatopatía grave en la oveja, originando un cuadro

patológico, caracterizado por necrosis y hemorragias.

Entre las lesiones causadas por la infestación de fasciolas se pueden describir:

Fibrosis hepática: es el resultado de la reorganización de los trayectos

migratorios originado por las fasciolas y se desarrolla fibrosis

postnecrótica. Se puede observar en todo el hígado, aunque es más

frecuente en el lóbulo ventral por ser preferentemente este el lugar de

entrada de las fasciolas. Las áreas de fibrosis son irregulares y destruyen

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la arquitectura hepática. Macroscópicamente, se observan filamentos

blanquecinos que demarcan el lóbulo hepático afectando a todo el

hígado. La lesión más significativa ocurre en la musculatura hepática,

observándose una marcada flebitis, de la vena porta, cuya reorganización

origina una intensa hipertensión portal.

Colangitis hiperplásica: es el resultado del traumatismo originado por los

trematodos adultos en la mucosa de los conductos biliares. Las fasciolas

producen con sus espinas y ventosas una intensa irritación de las células

epiteliales, que como reacción defensiva modifican su estructura.

(Cordero, 1999)

o) Diagnóstico:

El diagnóstico clínico se realiza por la sintomatología basada en la historia clínica,

observación de los signos y en un medio ambiente que permita el desarrollo del hospedero

intermediario. (Solórzano, 1999)

En la ausencia de datos, se pueden realizar pruebas de química sanguínea, específica

para detectar daños hepáticos, en donde se observa el incremento de la actividad

plasmática de la glutamato deshidrogenasa o la gama glutamil transferasa, procedente de

los conductos biliares, que indican fasciolasis aguda, subaguda o crónica. El incremento

de la actividad plasmática de la glutamato deshidrogenasa, enzima mitocondrial

hepatositaria, indica un proceso agudo. La actividad plasmática de la aspartato

aminotransferasa y la sorbitol deshidrogenasa también aumentan durante la migración de

los vermes por el parénquima hepático, aunque son enzimas menos hepatoespecíficas.

(Cordero, 1999)

El diagnóstico parasitológico se realiza de forma directa, por la identificación y

cuantificación de huevos de fasciolas presentes en las heces de los animales afectados,

mediante los métodos de flotación y sedimentación. Estos son útiles para el diagnóstico

de la fasciolasis crónica. Los métodos de flotación utilizan soluciones de alta densidad

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como el sulfato de zinc o el yodomercuriato potásico. El inconveniente de las técnicas de

flotación es la deformación y colapso de los huevos por fenómenos osmóticos, debido a

las soluciones utilizadas. Recomendándose entonces los métodos de sedimentación,

estos permiten la concentración de huevos en el sedimento tras repetidos lavados. La

adición de un colorante de contraste al sedimento permite destacar el color amarillo

dorado de los huevos. (Solórzano, 1999)

La técnica AMS III que por sus siglas en ingles sígnifica: Acid Medium Sustrate, es un

método diagnóstico de sedimentación, originalmente desarrollada para la detección de

huevos de Schistosoma y huevos de otros trematodos, de tal manera que es en la

actualidad es la única utilizada para el diagnóstico de estas parasitosis en países

desarrollados y en aquellos que presentan incidencia de plathelmintos. (Suzuki, 1981) En

Guatemala Chang (2008) encontró alta prevalencia en ovinos a través de esta técnica.

En los casos de fasciolasis aguda, el diagnóstico más seguro y eficaz se obtiene al realizar

la necropsia del animal enfermo. El conjunto de las lesiones hepáticas evidencian una

fibrosis parasitaria focal. El hígado se encuentra hipertrofiado y hemorrágico, con

numerosas fasciolas de 1-7 mm de longitud en el parénquima hepático e incluso, en el

peritoneo, bazo, páncreas y pulmones. En la fasciolasis subaguda se observa hipertrofia y

hemorragia hepática y la presencia de trematodes oscila entre 500-1,500 de los cuales la

mitad son adultos. En la fasciolasis crónica son características, además de una profunda

emaciación de la canal, la colangitis crónica, oclusión biliar y fibrosis hepática,

aproximadamente se encuentran 300 fasciolas en los conductos biliares. Debe realizarse

el diagnóstico diferencial entre la fasciolasis ovina aguda y la hepatitis necrótica infecciosa.

(Cordero, 1999)

En el inmunodiagnóstico se han descrito varias técnicas serológicas de precipitación,

aglutinación, inmunoflorescencia, ensayo inmunoenzimatico (ELISA) y fijación de

complemento para el diagnóstico de la fasciolasis, fundamentalmente en infecciones

experimentales. La técnica más difundida es la de ELISA con diferentes modificaciones,

utilizando antígenos somáticos o de excreción-secreción del parásito. Las pruebas

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inmunodiagnósticas pueden ser de gran valor para detectar la infección por Fasciola

hepatica durante el período de prepatencia y para la realización de estudios

epidemiológicos. (Cordero, 1999)

p) Tratamiento:

La terapéutica de la fasciolasis debe ir dirigida, tanto contra las fasciolas adultas,

localizadas en los conductos biliares, como contra las formas inmaduras en migración por

el parénquima hepático, con el fin de restaurar la función hepática. (Fiebiger, 1942)

Entre los fasciolicidas se encuentras los derivados nitrofenólicos, salicilanilidas, derivados

bianilinados, compuestos sulfamidados, bencimidazoles, probencimidazoles y compuestos

bifenólicos. (Cordero, 1999)

Siendo los fármacos de elección: el Triclabendazole para la forma aguda, subaguda y

crónica. El Clorsulón para la forma subaguda y crónica. Y el Albendazole, para la forma

crónica. (Soulsby, 1987)

q) Control:

El control eficiente de la fasciolasis requiere de un programa integrado, bien planeado y

ejecutado, para cada granja, área o región. Las estrategias que pueden ser usadas,

individualmente o en combinación son:

Realización de diagnósticos adecuados.

Implementación estratégica de antihelmínticos.

Combinación de tratamientos y rotación de potreros.

Control del hospedero intermediario mediante el uso de molusquicidas, como el

sulfato de cobre y cal viva. Siembra de Solanum americana, ya que se ha

comprobado que esta planta posee cierto efecto molusquicida, drenaje de

potreros.

Realizar análisis copropasitológicos para determinar la presencia de Fasciola

en el área, aproximadamente durante uno o dos años para identificar la época

en que se manifiestan los picos parasitarios. (Solórzano, 1999)

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31

PARTE III

3.1 RESULTADOS

a) Muestreo:

El presente estudio se realizó en dos cooperativas criadoras de ovinos en el municipio de

Chiantla, departamento de Huehuetenango, denominadas Unión Cuchumateca de Chabal

y Joya Hermosa de Climentoro.

Las muestras fueron tomadas durante la época lluviosa en los meses de septiembre a

octubre y se muestrearon 45 ovejas de la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal y 55

de la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro; de éstas 51 eran hembras y 49 eran

machos, comprendidas entre 6 a 60 meses de edad, a las que se les corrió la prueba de

sedimentación AMS III para el diagnóstico de Fasciola hepatica. Se seleccionó esta

técnica diagnóstica por ser más eficiente en un 62.5%, el tiempo de procesamiento es

menor (25.5 minutos menos), además los huevos se observan con mayor claridad, que en

el método tradicional de Dennis y colaboradores, esto fue comprobado por Chang I., M. R.

en el 2008.

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32

b) Discusión:

Luego de procesar las muestras se determinó que 32 ovinos fueron positivos a la prueba y

68 negativos, lo que representa un 32% de presencia del trematodo (Grafica 1), pero

afectando a ambos sexos, ya que en la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal 5

fueron machos y 12 hembras y en la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro 9 eran

machos y 6 hembras. (Grafica 2)

Grafica 1. Porcentaje de ovinos positivos y negativos a Fasciola hepatica con la técnica

AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya Hermosa de Climentoro.

Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009

No. de animales muestreados

Positivos Negativos

Series1 100% 32% 68%

0%

20%

40%

60%

80%

100%

120%

Porcentaje de ovinos positivos y negativos a Fasciola hepatica según la técnica AMS III

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33

La cooperativa con mayor presencia de Fasciola hepatica es la de Joya Hermosa de

Climentoro ya que 20 ovinos (36%) fueron positivos y 12 (27%) para la cooperativa de

Unión Cuchumateca de Chabal, en la prueba de AMS III. (Anexo 4 y 5)

Grafica 2. Porcentaje de ovinos hembras y machos positivos a Fasciola hepatica con la

técnica AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya Hermosa de

Climentoro.

Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009

Sexo No. de animales Porcentaje

Machos 14 44%

Hembras 18 56%

Total 32 100%

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Las edades que más fueron afectadas están comprendidas entre 13 y 24 meses para

ambas cooperativas. Hubo también presencia en las edades de 6 hasta los 49 meses.

(Grafica 3)

Grafica 3: Ovinos positivos separados por cooperativa y distribuidos por edad en meses.

Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009

En estudios previos realizados en ovinos para el diagnóstico de Fasciola hepatica, en

diferentes departamentos de Guatemala se encontró que la presencia de este trematodo

fue de 86.86% en el departamento de Sololá (Castillo, 1982), 38.90% en el departamento

de Huehuetenango (Maldonado, 1969), 34.70% en el departamento de Chimaltenango

(Escobar, 1974) los que fueron diagnosticados con la técnica tradicional de Dennis y

colaboradores y un 85% en el departamento de Huehuetenango con la técnica AMS III

(Chang, 2008). Los resultados obtenidos contrastan con los estudios anteriores ya que a

pesar de encontrarse más del 50% de presencia en los estudios mencionados

anteriormente, en esta investigación solamente se encontró un 32% de ovinos positivos.

La presencia de animales negativos puede deberse a que presentan parásitos en fases

1

3 3

1

3

1

0

2

8

5

2

3

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

0-6 m 7-12 m 13-24 m 25-36 m 37-48 m > 49m

UCC JHC

Ovinos positivos a F. h según la técnica AMS IIIde las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y

Joya Hermosa de Climetoro distribuidos por edad

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35

sexualmente inmaduras o por el pequeño tamaño (0.5 gr) de la muestra coprológica que

se procesa.

La presencia de Distomatosis hepática en las Cooperativas Unión Cuchumateca de

Chabal (27%) y Joya Hermosa de Climentoro (36%), (Anexo 3) indica que este parásito

ocasiona pérdidas económicas a los productores de la región.

Grafica 4: Ovinos positivos y negativos de las Cooperativas Unión Cuchumateca de

Chabal y Joya Hermosa de Climentoro, representado en porcentajes.

Fuente: Proyecto FODECYT 039-2009

Positivos Negativos

UCC 27% 73%

JHC 36% 64%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

Porcentaje de ovinos positivos y negativos a F. h. según la técnica AMS III de las Cooperativas Unión Cuchumateca de Chabal y Joya

Hermosa de Climentoro

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36

PARTE IV

4.1 CONCLUSIONES a) La presencia de Fasciola hepática en rebaños de ovinos en la Sierra de los

Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango, por medio de muestras

coprológicas, utilizando la técnica de sedimentación AMS III fue del 32%.

b) En la Cooperativa Unión Cuchumateca de Chabal se determinó un 27% de ovinos

positivos y un 36% en la Cooperativa Joya Hermosa de Climentoro De los ovinos

positivos a Fasciola hepatica se determinó que el 56% fueron hembras y 44%

machos.

c) Se elaboró el Manual de Identificación por Sintomatología de Fasciola Hepática en

Rebaños de Ovinos y Manual de Reconocimiento de Hospederos Intermediarios y

Características Ambientales para su Desarrollo.

d) Se elaboró el Plan de Manejo de Fasciola hepatica en Rebaños de Ovinos en el

Departamento de Huehuetenango.

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37

4.2 RECOMENDACIONES

a) Utilizar la técnica de AMS III para el diagnóstico de Fasciola hepatica en los

departamentos del país que presenten condiciones climatológicas y topográficas

que proporcionan el ambiente adecuado para que se cumpla el ciclo biológico del

parásito.111

b) Divulgar el Manual de Identificación por Sintomatología de Fasciola Hepática en

Rebaños de Ovinos y el Manual de Reconocimiento de Hospederos Intermediarios y

Características Ambientales para su Desarrollo a los ovinocultores del país.

c) Divulgar el Plan de Manejo de Fasciola hepatica en Rebaños de Ovinos en el

Departamento de Huehuetenango, en las regiones del altiplano del país.

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38

4.3 BIBLIOGRAFÍA

1. Aguilar, F. 1997. Parasitología Médica. Guatemala, GT, USAC. p. 182-189.

2. Borchet, A. 1975. Parasitología veterinaria. Trad. M Cordero del Campillo.

Zaragoza, ES, Acribia. p. 55-66.

3. Camargo, G. 2007. Fasciolasis en humanos. Guatemala, GT, Hospital Politécnico de Guatemala. (Comunicación personal)

4. Castillo Morales, HD. 1982. Epidemiología de fasciolasis hepática en ovinos y estudio sobre el hábitat de su hospedero intermediario, en Nahualá, Sololá. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 50 p.

5. Chang Ishcol, MR. 2008. Evaluación de la técnica AMS III contra la técnica tradicional de Dennis y colaboradores para el diagnóstico de distomatosis hepática en ovinos de la aldea el Carpintero, Chantla, Huehuetenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 53 p.

6. Cordero del Campillo, M. 1999. Parasitología veterinaria. España, ES. McGRAW HILL Interamericana. 968 p.

7. El Manual Merck de Veterinaria. 2000. 5 ed. Barcelona, ES, Grupo Editorial

OCEANO, S. A. 2,558 p.

8. Escobar Loarca, JA. 1974. Prevalencia de fasciola hepática en bovinos y ovinos en

el departamento de Chimaltenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT,

USAC/FMVZ. 33 p.

9. FAO (Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación,

IT). 1996. Curso Taller Regional en Epidemiología. Diagnóstico y Control de

Infecciones por Helmintos en Ganado. México p. 43-48.

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39

10. ________. (Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la

Alimentación, IT). s. f. Red de Helmintología para América y el Caribe.

Fasciola hepática y Distomatosis hepática en Bovinos (en línea). Consultado

10 sep. 2007. Disponible en htt:p://cria.gov.ar/helminto/fasciola/vene4 .htm

11. Fiebiger, J. 1942. Los parásitos animales del hombre y de los animales

domésticos. 3 ed. Madrid, ES, Imprenta y Editorial Viuda de Juan Pueyo. p.

154-173.

12. Flamenco Nuñes, FM. 1992. Prevalencia de Distomatosis hepática en niños de

edad escolar en la Meseta Central de los Cuchumatanes, municipio de

Chiantla, departamento de Huehuetenango, Guatemala C.A. Tesis Lic. Med.

Vet. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 96 p.

13. Guzmán Fuentes, VJ. 2005. Evaluación de dos subsistemas de producción ovina,

en la Meseta de los Cuchumatanes, departamento de Huehuetenango. Tesis

Lic. Zoot. Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 35 p.

14. López, A. et al. 2006. Fascilasis hepática: Reporte de un caso y revisión de

literatura. Revista Chilena de Radiología. 22 p.

15. Maldonado Gramajo, JA. 1969. Encuesta de fasciolasis hepática en ovinos del

departamento de Huehuetenango. Tesis Lic. Med. Vet. Guatemala, GT,

USAC/FMVZ. 22 p.

16. Miyazaki, I. 1,991. Helminthic Zoonoses. Japón, Kyushu University Fukuoka, p. 53-

59.

17. OMS (Organización Mundial de la Salud, US). 1979. Serie de Informes Técnicos.

Ginebra, CH, OMS/FAO. p. 90-92.

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40

18. Quiroz Romero, H. 1991. Fasciolasis en animales domésticos. En: Zoonosis

parasitarias. (Memorias). México, Universidad autónoma de México. p. 56-

63.

19. Solórzano Cermeño, LF. 1,999. Prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos del

municipio de Tactíc, departamento de Alta Verapaz. Tesis Lic. Med. Vet.

Guatemala, GT, USAC/FMVZ. 53 p.

20. Soulsby, E. 1987. Parasitología y enfermedades parasitarias en animales

domésticos. Trad. A. Martínez, F. Rojo Vásquez. 7 ed. México D.F.

Interamericana. 823 p.

21. Suzuki, N. 1981. Color atlas of human helminth eggs. 3 ed. Tokio, Japón. 200 p.

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41

4.4 ANEXOS

ANEXO 1: AREA DE TRABAJO

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42

ANEXO 2: CHARLA CON LOS OVINOCULTORES MIEMBROS DE LAS COOPERATIVAS

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43

ANEXO 3: REBAÑOS A MUESTREAR

Es importante resaltar el tipo de oveja presente en la región, así como que pastorean en

lugares con las condiciones ideales para el desarrollo de la Fasciola hepatica

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ANEXO 4: TOMA DE MUESTRAS

El comprender la importancia de la participacion de la mujer y los niños en el manejo de

los ovinos será clave para la implementación de programas de manejo.

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45

ANEXO 5: RESULTADOS DE LABORATORIO

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46

ANEXO 6: MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL

HÍGADO EN OVEJAS

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MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE

LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS

PROYECTO FODECYT No. 039-2009

Guatemala, abril del 2011

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MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.

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INTRODUCCIÓN

La Fasciola del Hígado (Fasciola hepática) es un parásito responsable de producir

la Distomatosis Hepática, conocida también como sanguijuela, duela del hígado,

babosa del hígado. Esta enfermedad es importante no solo por las pérdidas

económicas que produce al afectar a los rebaños de ovejas, cabras y vacas, sino

porque puede transmitirse a humanos, incluyendo a niños. En Huehuetenango se

han reportado casos de la enfermedad.

Para poder prevenir la enfermedad, es necesario identificar los síntomas que

causa el parásito, para que en un momento determinado se pueda establecer la

sospecha de la presencia de esta parasitosis en los rebaños de ovejas.

DEFINICIÓN

La Distomatosis (o Fasciolasis) es una enfermedad interna causada por

parásitos del género Fasciola, que puede afectar a cualquier mamífero y

ocasionalmente al hombre (zoonosis), pero es en los rumiantes donde

cobra mayor importancia. El agente causal de esta enfermedad es un

gusano chato, que se ubica en los conductos biliares del hígado de la oveja.

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MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.

49

Esta enfermedad es causa de decomisos de hígados en rastros y reduce

el potencial productivo de los animales afectados.

EL CICLO DE LA FASCIOLA HEPATICA

FORMAS DE PRESENTACIÓN

La Fasciola del hígado puede presentarse en tres formas clínicas:

1. Aguda

2. Sub Aguda

3. Crónica

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MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.

50

Dichas formas de presentación están íntimamente relacionadas con la

época del año, la disponibilidad de las fases infectivas de larvas muy

pequeñas (metacercarias) en los pastos y el número de larvas muy

pequeñas ingeridas. Esta clasificación se basa en los hallazgos adentro

del animal y depende del número de parásitos que se encuentran en el

hígado y de su estado de desarrollo.

Forma aguda

Se origina por la ingestión de un millar de larvas muy pequeñas y suele

afectar a ovejas expuestas por primera vez al parásito. Se han descrito dos

tipos de Fasciola del hígado aguda. El primero se caracteriza por la

existencia de 1000-2500 parásitos (gusanos) en el hígado, de los cuales al

menos el 60% se encuentran avanzando hacia el interior del hígado; en el

segundo se encuentran 700-1000 parásitos inmaduros o jóvenes,

albergando los conductos biliares un porcentaje de gusanos mayor que en

el tipo anterior.

Como resultado del gran número de parásitos, los animales enfermos

muestran los siguientes síntomas:

Debilidad

La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos

Dificultad para respirar (taquipnea o evidente disnea) cuando se

obliga al animal a moverse.

Abdomen hinchado

Inflamación (Edema) del párpado

Pérdida de peso

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MANUAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO EN OVEJAS.

51

Lana quebradiza

Inflamación de la papada (Edema submandibular)

Diarrea

Muerte repentina

Al abrir un cadáver, el hígado está agrandado y hay líquido en el

abdomen.

Forma sub aguda

Se produce cuando los animales consumen alimentos o agua

contaminados con las pequeñas larvas del parásito. Estas larvas llegan al

hígado donde pueden acumularse más o menos 1000 larvas. Las larvas

crecen, dañando el hígado. Las ovejas afectadas pierden peso y pueden

presentar los siguientes síntomas:

Están tristes y se apartan del rebaño.

La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos

Al apretar la panza, muchas ovejas afectadas sienten dolor.

Edema sub

mandibular

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52

En algunos animales se acumula líquido en la papada y a veces

dentro del abdomen.

En esta forma sub aguda, los animales suelen morir en una o dos

semanas después de que enferman.

Forma crónica

Es la forma más común. Es cuando llegan a haber más o menos 300

parásitos adultos en el hígado, en los animales afectados.

Los síntomas comunes son:

Pérdida de peso y anemia.

La vulva y el interior de la boca y los ojos están pálidos.

En algunos animales se acumula líquido en la papada.

Puede pasar meses antes de morirse.

Edema sub

mandibular

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53

LESIONES

Cuando la Fasciola del hígado infecta a un animal, invade el hígado,

dañándolo y tapando el conducto por donde sale la bilis.

Cuando el hígado está dañado por las fasciolas, no funciona bien y

causa alteraciones en otras partes del organismo.

Los daños al hígado, sólo se ven al abrir el animal después de muerto.

A continuación se observan fotografías de hígados dañados por la

Fasciola.

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Fasciolas en el

hígado de una

oveja

Fasciolas tapando el

conducto de la bilis

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55

ANEXO 7: MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE

HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA

DEL HÍGADO

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MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO

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INTRODUCCIÓN

La Fasciola adulta vive en el hígado de los rumiantes: ovejas, cabras, vacas, cerdos,

caballos, humanos y otros animales. Estando en el hígado, las fasciolas eliminan

huevos que salen con las heces fecales. Del huevo sale una pequeña larva que se

introduce en algunos caracoles pequeños, que le sirven de hospedero intermediario.

Las larvas se desarrollan y multiplican dentro de los caracoles. Cuando maduran, las

larvas salen de los caracoles y se pegan al pasto o se mantienen en aguas estancadas

(chagüitales, pozas, lagunas, charcas). Las larvas maduras llegan al hospedero final

(ovejas, cabras, vacas, cerdos, caballos, humanos y otros animales), cuando éste

consume plantas o agua contaminada.

Para poder tener un mejor entendimiento de este manual, se hace necesario el

conocimiento del ciclo biológico de la Fasciola del hígado.

Fasciola del

hígado

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CICLO BIOLÓGICO DE FASCIOLA DEL HÍGADO

Este inicia cuando una oveja infestada con Fasciola del hígado elimina huevos a

través de las heces fecales (un parasito adulto elimina entre dos y cinco mil huevos al

día, que desde la vesícula biliar, pasan al intestino mezclados con la bilis y salen al

exterior con las heces). En el interior de estos huevos se desarrolla una larva (gusanito

llamado miracidio), el cual se puede mover gracias a una serie de vellosidades

alrededor de su cuerpo. Estas larvas abandonan el huevo, en los pastizales buscan al

hospedero intermediario, que son los caracoles del género Lymnaea, al encontrarlo,

penetran en él, perdiendo las vellosidades y convirtiéndose en la siguiente fase de

desarrollo que es el esporocisto. Estos a su vez darán origen a la siguiente fase de

desarrollo que es la de redia, las cuales darán lugar al cuarto estado de desarrollo que

es el de cercaría. Todas estas fases en condiciones naturales se desarrollan en un

período entre 8-10 semanas.

Las cercarías abandonan a los caracoles y nadan en el agua en busca de alguna

planta (plantas a la orilla de un riachuelo o pasto en terrenos con pobre drenaje y que

se saturan de agua, “encharcados” o “chagüites”), donde se enquistan y dan lugar a la

última fase de desarrollo que es la metacercaria (fase infectiva para las ovejas y el ser

humano). De tal forma que la infestación se adquiere al ingerir las metacercarias

enquistadas en pastos u otras plantas o al ingerir agua conteniendo estas fases. Estas

son ingeridas y se desenquistan en el rumen, pasan a intestino delgado y atraviesan la

pared del mismo hasta alcanzar hígado para completar su desarrollo hasta el estado

adulto y de esa forma cerrar el ciclo.

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59

EL CICLO DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO

IDENTIFICACIÓN DEL HOSPEDERO INTERMEDIARIO

El caracol que funge como hospedero intermediario es el caracol de la especie:

Lymnaea truncatula, es un caracol ampliamente difundido en todo el mundo

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MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO

60

Clasificación Taxonómica

Reino Animal

Phylum Mollusca

Clase Gastropoda

Orden Basommatophora

Familia Lymnaeidae

Género Lymnaea

Especie Lymnaea truncatula

Características generales del género Lymnaea

Están clasificados entre los moluscos gasterópodos que poseen características

propias en su aparato respiratorio. Presentan ojos en la base del par de tentáculos

superiores, los cuales son retractiles, lo que indica que pueden invertirse como un

guante de hule cuando se repliegan los dedos. Presentan además una concha

helicoidal, ovalada, oblonga, de contornos cónicos. Son ovíparos y depositan sus

huevos envueltos en una masa gelatinosa.

En estado adulto son anfibios, es decir, viven dentro y fuera del agua, sobre lodo,

entre grietas y en ocasione sobre vegetación acuática que se encuentra en los bordes

de los cuerpos de agua, nunca están expuestos a la luz directa del sol.

Se diferencian básicamente por los rasgos de la

concha y órganos internos. Esta especie se ha

reportado en Guatemala, que presenta un largo de

concha promedio de 6.9 mm. Muestran de 4 a 5

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61

espirales muy marcadas, de derecha a izquierda, profundamente gravadas y con

aspecto de escalera.

El color de las conchas de estos caracoles varía

ostensiblemente en dependencia del medio en que se

encuentran.

CARACTERÍSTICAS AMBIENTALES PARA EL DESARROLLO

DEL HOSPEDERO INTERMEDIARIO

El desarrollo de estos caracoles depende principalmente de factores ambientales

tales como la temperatura, la cual puede estar entre el rango de -3 a 27 grados

centígrados. La humedad relativa también juega un papel preponderante y se habla

que el rango de esta se sitúa entre 60-80%. Es imprescindible para el desarrollo la

presencia de agua, la cual puede ser la que se encuentre anegando terrenos (5 a 30 cm

de profundidad), condiciones que se presentan en terrenos con topografía más o

menos plana o con suelos con pobre

drenaje, que impiden la filtración de

la misma; o bien la presencia de

riachuelos con corrientes con un

caudal lento.

Aunado a esto la presencia de

plantas acuáticas o de pasto que

permita a la cercarías enquistarse

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MANUAL PARA EL RECONOCIMIENTO DE HOSPEDEROS INTERMEDIARIOS DE LA FASCIOLA DEL HÍGADO

62

para formar las metacercarias y de esta forma poder ingresar al hospedero definitivo.

En general los caracoles prefieren como zonas de cría los terrenos bajos, zonas

inundadas; el agua debe ser estancada o con poca corriente, clara y rica en oxigeno. El

pH del agua debe ser entre 5 y 9. Prefieren sustratos fangosos o de arcilla fina, pero

también puede ser arenoso si los caracoles disponen de los alimentos precisos, el cual

consiste principalmente en polen, plantas en putrefacción y cianobacterias.

DIFERENTES VISTAS DE LOS CARACOLES

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63

ANEXO 8: PLAN DE MANEJO DE FASCIOLA

HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN EL

DEPARTAMENTO DE HUEHUETENANGO

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HEPATICA EN REBAÑOS DE OVINOS EN

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INTRODUCCIÓN

El departamento de Huehuetenango, por el factor de su ubicación geográfica, es epidemiológicamente hablando, el sitio ideal para el desarrollo del tremátode Fasciola hepatica, el cual es responsable de la enfermedad denominada fasciolasis o distomatosis hepática. La razón principal del desarrollo de este helminto en Huehuetenango es la presencia de suelos poco profundos, y ya que es un área con precipitación pluvial con un promedio anual de 1,344 mm. El agua que se acumula inundando las áreas de pastoreo, así como la formación de riachuelos de curso lento, favorece la presencia y desarrollo del hospedero intermediario. Lepe López (2009) determinó que para el municipio de Chiantla el hospedero intermediario presente es Pseudosuccinea columella, pero no descarta que en otros municipios existan otros géneros de moluscos que jueguen este papel en el ciclo biológico de la Fasciola hepatica.

MEDIDAS DE CONTROL

Las medidas de control para este parásito y la enfermedad que ocasiona, van encaminadas a los aspectos siguientes:

a. Condiciones ambientales

Evitar que las áreas de pastoreo se mantengan anegadas, para reducir al máximo, el riesgo que los animales domésticos, particularmente los más susceptibles como lo son los ovinos y bovinos, ingieran la fase infectiva del parásito. Para ello, se pueden cerrar de alguna manera (cercas con alambre espigado, cercas vivas u otros) estas áreas.

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Además, se puede intentar reubicar cursos y salidas de agua del área anegada, por zanjeo o drenaje de las mismas. Por último, las pasturas ubicadas en humedales, pueden ser utilizadas para henificación.

b. Presencia del parásito en los animales Lo primero que debe hacerse, es tomar muestras de heces fecales de todos los ovinos de la explotación, directamente del recto del animal, trasladándose lo más rápido posible en hieleras, para realizar pruebas coprológicas a nivel de laboratorio especializado. Existen dos pruebas de sedimentación específicas para el diagnóstico de Fasciola hepática, éstas son la de Dennis y colaboradores y la denominada AMS III. Chang Ishcol (2008) al comparar las dos pruebas, determinó que la segunda mencionada, tuvo una efectividad del 85% para el diagnóstico de este trematode, contra un 22.5 % de positividad con la prueba de Dennis y col., usando las mismas muestras fecales. Si solamente se quiere determinar la presencia del parásito, la técnica de Dennis es útil, pero si se desea establecer prevalencia y el desarrollo del control de la parasitosis, la técnica que debe utilizarse, es la AMS III.

c. Presencia del hospedero intermediario (caracoles)

El hospedero intermediario, son gasterópodos del género Lymnea, el cual es un caracol con predilección por las áreas húmedas. Para el control del hospedero intermediario, existen tres maneras básicas: física, química y biológica.

1. Física. Se basa en el drenaje de las aguas estancadas como se mencionó

anteriormente.

2. Química. Se basa en la utilización de productos tóxicos para los caracoles

(molusquicidas) como lo son el sulfato de cobre (ligeramente tóxico en animales)

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en soluciones 0.5 al 2%, aplicando un litro por cada 100 m2; el pentaclorofenol en dosis de 10 gramos por metro cuadrado, pero éste es tóxico para plantas y animales, por lo que se debe ser cuidadoso en su aplicación y solo al 2% aplicando esta solución o un kilogramo por cada diez metros cuadrados. Así también se ha utilizado cal (carbonato de calcio) en dosis de 100 a 150 gramos por metro cuadrado. Este químico fue evaluado por Chang Albizurez (2008) a nivel de laboratorio, y campo, comprobando que la concentración de 9 gramos de cal por litro de agua (380 g/m2) elimina el 92.38% de los caracoles en condiciones naturales, por lo que ésta puede ser utilizada, por su bajo costo y fácil aplicación, además de no ser tóxica para plantas y animales.

3. Biológica. Se basa en el uso de aves acuícolas que se alimentan de caracoles,

como lo son los patos, gansos, cisnes, o la introducción de aves silvestres como aves tordillos, mirlos, tordos y zórzalos, podría ser útil. Además de las aves, plantas resinosas como Solanum americanum, S. nigrescens y de las familias Phytolaccaceae, Compositae, Euphorbiaceae, Anacardiaceae y Solanaceae en canales de irrigación y agua estancada son útiles para la reducción del número de caracoles.

d. Control del parásito en el animal

Se basa en la administración de productos helminticidas:

Albendazol. Dosis 15 mg/kg de peso vivo, vía oral.

Clorsulón + ivermectina. Dosis 2 mg/kg de peso vivo, vía subcutánea.

Tiabendazol. Dosis 200-400 mg/kg de peso vivo, vía oral.

Triclabendazol: Dosis 10 mg/kg de peso vivo, vía oral.

Oxiclosamida: Dosis 10-15 mg/kg de peso vivo, vía subcutánea.

Nitroxinil: Dosis 10 mg/kg de peso vivo, vía oral.

e. Consideraciones socioculturales En las zonas endémicas, se deben establecer programas educativos para la población, principalmente la forma de transmisión del parásito, los riesgos hacia la salud del humano y cómo se puede evitar y controlar.

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Todas estas medidas de control, podrán llevarse a cabo, siempre y cuando todos los actores en las comunidades que crían animales susceptibles, instituciones públicas y privadas, estén dispuestas a colaborar para minimizar la presencia de Fasciola hepatica en las áreas endémicas como lo es el caso del departamento de Huehuetenango.

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PARTE V

5.1 INFORME FINANCIERO