identificación de triatominos

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ

INSTITUTO NACIONAL DE SALUDMPR-CNSP-019 1

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE IDENTIFICACIÓN DETRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUVIIDAE) DEL PERÚ

ELABORACIÓN:Blgo. ABRAHAM G. CÁCERES LÁZARODivisión de Entomología.

Centro Nacional de Salud Pública


2 INSTITUTO NACIONAL DE SALUDMPR-CNSP-019

Catalogación hecha por el Centro de Documentación e Información

del Instituto Nacional de Salud (INS)

ISBN 9972– 857 – 26 – 3 (O.C.)ISBN 9972– 857 – 47 – 6 (N° 41)ISSN 1607– 4904Hecho el Depósito Legal Nº 1501012005-1348

© Ministerio de Salud, 2005Av. Salaverry, cuadra 8 s/n, Jesús María, Lima, PerúTeléfono: (511) 431-0410

© Instituto Nacional de Salud, 2005Cápac Yupanqui 1400, Jesús María, Lima, PerúTeléfono: (511) 471-9920 Fax: (511) 471-0179Correo electrónico: [email protected]ágina web: www.ins.gob.pe

Publicación aprobada con R.J. Nº 111-2005-J-OPD/INS

Portada: Espécimen macho de Triatoma infestans

Se autoriza su reproducción total o parcial, siempre y cuando se cite la fuente.

Cáceres Lázaro, Abraham Manual de procedimientos de identificación de triatominos (hemiptera: reduviidae) delPerú/Elaborado por Abraham Cáceres Lázaro. -- Lima: Ministerio de Salud, InstitutoNacional de Salud, 2005. 60 p.: 15 cm. -- (Serie de Normas Técnicas; 41)

1.TRIATOMA /crecimiento y desarrollo 2. INSECTOS VECTORES 3. CONTROLVECTORIAL 4. TÉCNICAS Y PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO 5. PERÚ I. Cáceres Lázaro, Abraham III. Instituto Nacional de Salud (Perú) IV. Perú. Ministerio de Salud



CONTENIDO

INTRODUCCIÓN 5

SECCIÓN 11.1. Objetivo ....................................................................................................... 71.2. Campo de aplicación ................................................................................... 71.3. Responsabilidades ....................................................................................... 71.4. Documentos de referencia ........................................................................... 81.5. Definiciones ................................................................................................ 8

SECCIÓN 22.1. Disposiciones .............................................................................................. 112.2. Principales medidas de bioseguridad .......................................................... 11

SECCIÓN 33.1. Generalidades de los triatominos ................................................................ 133.2. Los triatominos ........................................................................................... 133.3. Ecología de los triatominos ......................................................................... 143.4. Ciclo biológico ............................................................................................. 153.5. Características morfológicas de los triatominos ......................................... 19

SECCIÓN 44.1. Encuesta y vigilancia de triatominos ........................................................... 244.2. Método para detectar infestaciones ........................................................... 244.3. Examinar los ambientes internos (intradomicilios) y externos

(peridomicilios) de una vivienda ............................................................... 254.4. Buscar triatominos en ambientes extradomiciliarios (selváticos) ............... 274.5. Equipos para capturar triatominos ............................................................. 294.6. Envío de triatominos ................................................................................... 294.7. Indicadores entomológicos .......................................................................... 31

SECCIÓN 55.1. Identificación de triatominos ...................................................................... 355.2. Clave taxonómica para triatominos del Perú .............................................. 35



SECCIÓN 66.1. Montaje de ejemplares de triatominos en alfileres ..................................... 39

SECCIÓN 77.1. Estudio de la infección natural .................................................................... 417.2. Examen de triatominos para investigar Trypanosoma cruzi o

Trypanosoma rangeli ................................................................................... 42

SECCIÓN 88.1. Adaptar colonias de triatominos al laboratorio .......................................... 45

SECCIÓN 99.1. Xenodiagnóstico .......................................................................................... 46

SECCIÓN 1010.1. Lista de especies en el Perú ...................................................................... 4910.2. Triatoma infestans (Klug, 1834) ............................................................... 5010.3. Panstrongylus herreri (Wygodzinsky, 1948) .......................................... 5110.4. Rhodnius ecuadoriensis (Lent y León, 1958) .......................................... 52

SECCIÓN 1111.1. Bibliografía ................................................................................................ 53

ANEXO A .......................................................................................................... 57ANEXO B .......................................................................................................... 59ANEXO C .......................................................................................................... 61



INTRODUCCIÓN

La enfermedad de Chagas o trypanosomiasis americana es una infecciónocasionada por el parásitoTrypanosoma cruzi y constituye un problema desalud pública para América Latina. La enfermedad se distribuye entre el límitede México con los Estados Unidos y el sur de Chile y Argentina lo que corres-ponde a los paralelos 42º LN y 45º LS.

La trypanosomiasis americana es una de las enfermedades prioritarias para elPrograma del Banco Mundial de la OMS/UNDP. Después de la malaria, es la másseria y de amplia distribución en los seres humanos de las Américas. Su presen-cia en el continente americano data de hace más de 2000 años; pues, se hademostrado el megacolon chagásico y posiblemente cardiopatía en momiasexhumadas pertenecientes a los indios Wankarani establecidos en el interior dela Provincia de Tarapacá a 1100 msnm (norte de Chile) procedentes de Bolivia.

Los vectores del agente etiológico de la trypanosomiasis americana son losinsectos triatominos que se encuentran distribuidos en las regionesneotropicales y neárticas desde los 41º LN y 46º LS.

Aproximadamente, 90 millones de personas en Latinoamérica están en ries-go de infectarse con el Trypanosoma cruzi, y se estima que entre 16 y 18millones de ellas se encuentran infectadas.

En el Perú, esta enfermedad es un problema de salud pública que afecta a lapoblación de 15 departamentos, siendo dos las zonas más afectadas: a)Nororiente, y b) Sudoccidental. Con respecto a los triatominos, se han notifica-do en localidades de algunas provincias de 20 departamentos.

En la historia natural de esta enfermedad, uno de los eslabones que permiteestablecer la medida de control y vigilancia epidemiológica es, sin duda, elestudio de los triatominos transmisores y los factores determinantes paraconsiderarlos vectores efectivos.

El control de la enfermedad de Chagas se basa en la eliminación o control delas poblaciones de los triatominos mediante diversas estrategias como el con-trol químico, el ordenamiento del medio y la educación sanitaria. Para ello, esimportante también la decisión de organizar y llevar adelante un programaantitriatomínico que debe tener una base en la decisión política a largo plazopara que sustente su permanencia, su vigilancia, así como la formulación ydesarrollo de investigaciones. Lo contrario, implica correr riesgos serios en lainterrupción del programa, lo que significaría perder los esfuerzos y recursosinvertidos, y lo más grave y peligroso, no alcanzar los objetivos.



El presente Manual de procedimientos de identificación de triatominos(hemiptera: reduviidae) del Perú proporciona de manera sencilla y resumi-da la información de los aspectos entomológicos básicos y fundamentalespara apoyar la investigación y los programas de vigilancia y control de estaenfermedad.

Se agradece a todas las personas que de alguna manera han apoyado ybrindado facilidades para la redacción del presente manuscrito, en especial alDr. César Náquira Velarde y al Dr. Alfonso Zavaleta Martínez-Vargas por lassugerencias y la revisión del Manual; a la Dra. Juana Lung de Herrer, porfacilitar las referencias bibliográficas, y a los Dres. Alejandro Llamoga Sánchezy Roque Fernández Vera por haber realizado algunas tomas fotográficas delos triatominos, que sirvieron para ilustrar el presente manual.

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE IDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUVIIDAE) DEL PERÚ


SECCIÓN 1

GENERALIDADES

1.1. OBJETIVO

Brindar información referente a los procedimientos y técnicas de: 1) captura,2) conservación, 3) embalaje, 4) transporte de ejemplares, 5) montaje, y 6)identificación de los triatominos, con énfasis en los que han sido incriminadoscomo vectores del agente etiológico de la enfermedad de Chagas; asimismo,el estudio de su capacidad vectorial. Se concluye con la presentación de cla-ves para diferenciar géneros y especies de triatominos notificados en el Perú.

1.2. CAMPO DE APLICACIÓN

Para el personal de los laboratorios regionales, intermedios y locales queintegran la Red Nacional de Laboratorios de Salud Pública.

1.3. RESPONSABILIDADES

1.3.1. El Centro Nacional de Salud Pública (CNSP), a través de la DirecciónEjecutiva de Enfermedades Transmisibles (DET), es responsable deautorizar la elaboración, revisión y actualización del presente manual,de acuerdo con los procedimientos aprobados por el Instituto Nacionalde Salud.

1.3.2. Los directores regionales de salud y los directores o jefes de los esta-blecimientos de salud son responsables de autorizar, proporcionar losrecursos necesarios y designar al personal responsable y calificadopara la aplicación y la supervisión de las disposiciones contenidas enel presente manual.

1.3.3. El personal de los establecimientos de salud es responsable de plani-ficar las acciones, organizar, controlar y capacitar al personal; así comode proporcionar equipos, materiales, reactivos e instalaciones.

1.3.4. Los jefes o responsables de los laboratorios deben asegurar el controlinterno de la calidad.

1.3.5. Los profesionales designados para realizar el diagnóstico son respon-sables de controlar el cumplimiento de las disposiciones contenidas

manual de CHAGASnueva versión.pmd 28/04/05, 05:34 p.m.7



en el presente manual y, además, de mantener la confiabilidad de susactividades e informar a las instancias superiores en caso de ocurren-cia de variaciones en las especificaciones de los procedimientos esta-blecidos.

1.3.6. El personal asignado para realizar esta actividad, descrita en el presentemanual, debe estar calificado para manejar técnicas y métodos de en-sayo, aplicar medidas de bioseguridad y de buenas prácticas de labora-torio, y mantener la confiabilidad de las actividades que realiza.

1.4. DOCUMENTOS DE REFERENCIA

1.4.1. Instituto Nacional de Salud. Manual de procedimientos de laboratoriopara la obtención y envío de muestras (1). Serie de Normas TécnicasNº 15, 2da ed., 1997.

1.4.2. Instituto Nacional de Salud. Manual de normas de bioseguridad. Seriede Normas Técnicas Nº 18, 2da ed., 1997.

1.5. DEFINICIONES

1.5.1. Capacidad vectorial. Factibilidad del triatomino para transmitir lostrypanosomatideos.

1.5.2. Clípeo. Borde anterior de la cabeza, compuesto de dos escleritos: unogrande posterior, denominado postclípeo y otro pequeño anterior, arti-culado flexiblemente al postclípeo.

1.5.3. Conexivo. Margen lateral saliente en el abdomen de los hemípteros.

1.5.4. Cópula. Unión física de los insectos machos y hembras.

1.5.5. Doméstico. Triatomino que desarrolla todo el ciclo evolutivo en el inte-rior de una vivienda.

1.5.6. Depredador. Un insecto que naturalmente caza y devora a otros in-sectos.

1.5.7. Escutelo. Porción posterior de la superficie dorsal del mesotórax, visi-ble en la base de las alas. Es un esclerito triangular en todos los géne-ros, excepto en el Parabelminus en el que se presenta trapezoidal. Lasuperficie dorsal del escutelo es rugosa, con un área central más omenos deprimida y bordeada por dos o más surcos convergentes; la




proyección posterior del escutelo en muchos casos es cilíndrica,elongada y subhorizontal con ápice puntiagudo, redondeado o a vecestruncado.

1.5.8. Estercolarios. Agrupamiento de Trypanosoma que lleva a cabo sudesarrollo en el intestino del insecto vector.

1.5.9. Exotepterigoto. Adjetivo que se deriva de exopteriota, subdivisión delos insectos que incluye a los hemípteros y otras órdenes cuya meta-morfosis o desarrollo a través de su ciclo de vida pasa de huevo a ninfay a adulto. A esta forma de desarrollo se le denomina tambiénhemimetábolo o metamorfosis incompleta.

1.5.10. Exuvia. Cubierta exterior de la que se despojan los insectos cuandomudan a su próxima etapa de desarrollo.

1.5.11. Gena. Es un segmento de la cabeza ubicado lateralmente al clípeo. Elápice de éste puede ser redondeado o en punta.

1.5.12. Hemiélitro. Alas delanteras de los hemípteros con una porción basalmás gruesa y otra porción distal membranosa.

1.5.13. Hábitat. Lugar donde vive en forma natural el insecto.

1.5.14. Huésped. Organismo en el cual se aloja un parásito u otrosmicroorganismos.

1.5.15. Hemíptera. Uno de los 29 órdenes de insectos. Estos poseen alasdelanteras denominadas hemiélitros y tienen piezas bucaleschupadoras y perforadoras.

1.5.16. Índice de Infestación Domiciliaria (IID). Número de viviendas infesta-das sobre el número total de viviendas encuestadas multiplicado por100; se expresa en porcentaje. Es útil para estratificar áreas por interve-nir mediante control vectorial.

1.5.17. Índice Trypano-Triatominico (ITT). Es el número de triatominos infecta-dos naturalmente con Trypanosoma cruzi sobre el total de triatominosexaminados multiplicado por 100; se expresa en porcentaje. Es útilpara estratificar áreas por intervenir mediante muestreo parasitológicopara enfermedad de Chagas y para efectuar el control vectorial.

1.5.18. Metacíclico. Forma infectante del Trypanosoma presente en las hecesdel vector.

1.5.19. Ocelo. Son ojos simples situados a ambos lados de la cabeza, casidetrás de los ojos compuestos.




1.5.20. Operculado. Término que se usa para describir a los huevos que po-seen una tapa notoria.

1.5.21. Ovipostura. Postura de los huevos.

1.5.22. Peridoméstico. Insecto que vive en depósitos, corrales de aves u otrosabrigos de animales cercanos a las viviendas.

1.5.23. Polimorfismo. Que presenta forma distinta, que no está relacionadacon las etapas del ciclo de vida.

1.5.24. Proboscis. Piezas bucales de los hemípteros que forman un tubo en-roscado bajo la cabeza. El tubo tiene un estilete que penetra los tejidosdel huésped.

1.5.25. Pronoto. Es un esclerito a manera de escudo que cubre el mesotóraxde forma trapezoidal, posee dos lóbulos anteriores y dos posteriores;el lóbulo posterior puede presentar una superficie lisa o granulosa ytubérculos distales y laterales.

1.5.26. Rostrum o rostro. Es el órgano picador chupador. Se inserta debajodel lado posterior de la cabeza, a la cual se denomina gula. El rostrumen los triatominos hematófagos consta de tres segmentos; en la granmayoría de los redúvidos entomófagos el rostrum es curvado. El se-gundo segmento generalmente es el más largo y el tercero es el máscorto.

1.5.27. Surco estridulatorio. Es una depresión o surco localizado en la porcióncentral del prosternum (porción ventral del protórax) donde descansa elápice del rostrum cuando se encuentra replegado o doblado hacia abajo.

1.5.28. Xenodiagnóstico. Método para el diagnóstico parasitológico de la en-fermedad de Chagas, donde se permite que un triatomino no infectadose alimente con sangre del paciente, examinándose el contenido rectaldel insecto a partir de los 15 días posteriores, en busca de parásitosque probablemente hayan podido multiplicarse en sus intestinos.

1.5.29. Yugo. Es una placa de la cabeza situada en la base de la gena, es deforma subtriangular y pequeña.




SECCIÓN 2

2.1. DISPOSICIONES

2.1.1. Las disposiciones contenidas en el Manual de normas de bioseguridad.Serie de Normas Técnicas Nº 18, 2da ed., son aplicables para el cumpli-miento de las disposiciones del presente manual.

2.1.2. Se debe aplicar las medidas de bioseguridad pertinentes, especial-mente las aplicables a:

2.1.2.1. El ambiente.

2.1.2.2. El equipo.

2.1.2.3. El personal.

2.1.2.4. Animales de experimentación.

2.1.2.5. Los triatominos.

2.1.2.6. Las muestras y su procesamiento.

2.1.2.7. La esterilización.

2.1.3. La bioseguridad es un conjunto de medidas preventivas para protegerla salud y la seguridad del personal que trabaja en el laboratorio, frentea diferentes riesgos producidos por agentes.

2.1.4. Es responsabilidad de la dirección del laboratorio, establecer y aplicarlas normas y procedimientos de bioseguridad detalladas por escrito.

2.1.5. La dirección del establecimiento de salud debe dar las facilidades paraque las normas de bioseguridad se cumplan.

2.1.6. Los principales peligros son las exposiciones por puntura accidentalcon agujas de jeringas, estiletes, pinzas, etc.; por corte con bisturí,láminas y cubreobjetos contaminados y por exposición en membranasmucosas o en la piel que presenta lesión activa, laceraciones, heridaso rasguños.

2.2. PRINCIPALES MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD

2.2.1. Todos los triatominos deben ser trasladados de su ambiente natural allaboratorio en vasos colectores apropiados, para evitar que escapen.

2.2.2. A todos los triatominos se les debe tratar como potencialmente infecta-dos con Trypanosoma cruzi.




2.2.3. En el momento de manipular, identificar y disectar los triatominos, sedebe utilizar mascarillas, guantes nuevos y guardapolvo.

2.2.4. Lavarse las manos luego de concluir el trabajo con los triatominos.

2.2.5. Si la persona que va a manipular los triatominos presenta cortaduras orasguños en las manos y antebrazos, éstos deben ser cubiertos y estarbien protegidos.

2.2.6. Debe utilizarse zapatos que cubran los pies, no debe usarse sandaliaso zapatos abiertos.

2.2.7. El procesamiento de los triatominos debe realizarse sobre una super-ficie de trabajo protegido por papel absorbente plastificado o papel defiltro.

2.2.8. La superficie de trabajo debe ser descontaminada por el operador an-tes y después de cada actividad.

2.2.9. Informar inmediatamente cualquier accidente al jefe del laboratorio.

2.2.10. Se debe disponer de un ambiente apropiado para el lavado de los ojosen caso de exposición accidental por salpicaduras.

2.2.11. Todos los instrumentos utilizados durante el trabajo con triatominosdeben descontaminarse antes de ser eliminados, en solución desin-fectante y luego ser autoclavados (121°C durante 20 minutos) o incine-rarlos.

2.2.12. Si se trabaja con cultivo para Trypanosoma cruzi, se debe usar unacabina de flujo laminar y mechero Bunsen o mechero de alcohol.

2.2.13. El animal infectado experimentalmente con Trypanosoma cruzi debeser colocado en una jaula apropiada y segura, a la que se le adheriráuna etiqueta que indique ANIMAL INFECTADO CON TRYPANOSOMACRUZI, para luego depositarla en un ambiente seguro y apropiado.




SECCIÓN 3

3.1. GENERALIDADES DE LOS TRIATOMINOS

El orden Hemiptera se divide en cuatro subórdenes:

COLEORRHYNCHA

1 Familia

Fitófagos

AUCHENORRHYNCHA

28 Familias

Fitófagos

HETERÓPTERA

75 Familias

Fitófagos y

predatores

STEINORRYNCHA

41 Familias

Fitófagos

En el suborden Heteróptera se ubica la familia Reduviidae con 25 subfamilias,todas de ellas predatoras, excepto la subfamilia Triatominae que es hematófagay está integrada por más de 100 especies.

3.2. LOS TRIATOMINOS

Son insectos del orden Hemiptera. Se caracterizan por poseer aparato bucalsuccionador; la mayoría son fitófagos, algunos predadores y unos pocos sonhematófagos.

3.2.1. Su distribución abarca América y Asia, pero la mayor densidad de lasespecies se localiza en América.

3.2.2. A los triatominos se les denomina con diversos nombres regionales,como: “chinches hocicones” y “cacarachuelos” en México; “chinchesmamones” y “chinches de monte” en Panamá; “pitos” en Colombia; enVenezuela “pitos” y “chipos”; en Bolivia “hitas”; en Ecuador “chinchorros”,“chupasangre” y “chinches de caballo”; en Argentina, Chile, Uruguay yotras partes de Sudamérica se les denomina “vinchucas”; en Perú seles conoce como: “chinches”, “chinchones” y “chirimachas”; en Brasilse les conoce como “barbeiros”.

3.2.3. Estos hemípteros son de tamaño pequeño o mediano, el cual varíaconsiderablemente en los diferentes grupos de géneros, aunque lahembra casi siempre supera al macho en tamaño. La coloración esgeneralmente sencilla, no obstante, también existen especies concolores vistosos.




3.3. ECOLOGÍA DE LOS TRIATOMINOS

3.3.1. La principal característica biológica de los triatominos, tanto de lasninfas como de los adultos de ambos sexos, es la de succionar san-gre, principalmente de aves y mamíferos.

3.3.2. Sus hábitats naturales son ecotopos silvestres que sirven de nidos, refu-gios o lugares de descanso para mamíferos, aves y reptiles; los cualesconstituyen sus fuentes naturales de alimentación. Algunos triatominostienen preferencia por cierta especie en particular, pero la mayoría deellos se alimenta de una amplia variedad de huéspedes.

3.3.3. Generalmente los triatominos se alimentan durante la noche, pero enlugares oscuros pueden alimentarse durante el día.

3.3.4. La presencia de animales incrementa y preserva la población, puesèstos se constituyen en fuentes de alimentación; algunos animalespueden ser predadores de triatominos, y a la vez desempeñar un papelen la dispersión pasiva de los vectores, constituyéndose como hués-pedes y como reservorios de diversos patógenos. Por otro lado, losfactores climáticos, principalmente la temperatura, al parecer controlanel índice de incremento de las poblaciones de los triatominos.

3.3.5. Otro factor para la colonización, proliferación y mantención de lostriatominos son las condiciones de edificación de las viviendas quecrean microhábitats apropiados. En las construcciones de las vivien-das se observan hendiduras, rajaduras y grietas en las paredes y te-chos de barro o cemento; asimismo, en las uniones entre los adobes yladrillos, los espacios entre tablas de madera, también los techos dehojas de palmeras. Otros factores que favorecen la infestación son eluso de telas como cortinas, el almacenamiento de los productos de lascosechas, el depósito de adobes y el apilamiento de maderas y palosdentro de la casa, y, por último, la presencia de animales domésticosen el interior de las casas, como: cuyes, conejos, gallinas, pavos, pe-rros, gatos, etc.

3.3.6. La picadura es poco dolorosa y se puede soportar, provocando sóloa veces un ligero prurito y en algunas ocasiones una ampolla en ellugar de la picada, siendo la cara, los miembros superiores y lospies los más afectados.

3.3.7. Al momento o después de alimentarse, el triatomino hace una deyec-ción líquida que tiene dos aspectos: uno de color amarillento que seseca rápidamente al contacto del aire, y otro que se seca lentamente yes de color negro. Este comportamiento de picar y defecar se debería a




la necesidad del triatomino de succionar más sangre y almacenarladesocupando su intestino.

3.4. CICLO BIOLÓGICO

3.4.1. Los triatominos son insectos hemimetábolos. De huevo pasan por cin-co estadios ninfales (Fig.1), en los que son muy parecidos a los adul-tos pero de menor tamaño y carecen de alas. La obtención de sangrepara los triatominos es muy necesaria para la muda y continuación desu desarrollo.

3.4.2. El ciclo de vida de los triatominos oscila entre 4 y 16 meses o más.Muchas especies de triatominos han sido adaptados a condiciones delaboratorio con temperaturas que fluctúan entre 24 ºC y 27 ºC, y a unahumedad relativa entre 70% y 75%, con la finalidad de conocer el ciclobiológico de cada triatomino. Respecto de estos estudios se da a conocerlo siguiente:

3.4.3. Huevo

Los huevos son colocados entre 10 y 15 días después de la cópula. Algunashembras no apareadas pueden poner algunos huevos, pero éstos seráninfértiles. Las hembras fértiles generalmente ponen huevos una sola vez, peroen muchos casos continúan poniendo huevos durante toda su vida. El núme-ro de huevos puestos por hembra y la frecuencia de la ovipostura dependeprincipalmente de la cantidad de sangre ingerida. En la mayoría de los casos,cada hembra pondrá entre 100 y 600 huevos durante su vida.

Figura 1. Ciclo biológico de un triatomino.




Los triatominos son de hábitos terrestres, generalmente colocan sus huevosindividualmente o en grupo, en cualquier lugar que encuentre la hembra. Perolas especies que habitan en los árboles –como es el caso de la mayoría deespecies de Rhodnius– colocan sus huevos en grupos pequeños adheridosal sustrato.

Los huevos son de forma oval, más o menos elípticos (Fig. 2 y 3), presentan unopérculo en uno de sus extremos, por el cual emerge la ninfa I. Al inicio, loshuevos son de color blanco-perla o gris, posteriormente cambian a rosado orojizo a medida que el embrión desarrolla, observándose por transparencialos ojos de la futura ninfa. El tiempo que transcurre desde la puesta de loshuevos hasta que eclosiona la primera ninfa varía para cada especie; tambiénvaría para una misma especie cuando habitan en regiones diferentes. Enalgunas especies el tiempo es de entre 10 y 30 días. El corión presentaornamentaciones que varían según las especies.

Figura 2. Huevos eclosionados de Panstrongylus herreri.




3.4.3. Ninfa (Fig. 4)

Presenta cinco estadios ninfales. Transcurridos de dos a tres días despuésde emerger, las ninfas ya están listas para alimentarse; de no conseguir ali-mento pueden pasar varias semanas en ayunas.

Todas las etapas de ninfas normalmente se alimentan de la misma variedadde huéspedes que los adultos presentes en el mismo hábitat. Bajo buenascondiciones, las ninfas pueden ingerir sangre hasta nueve veces su peso,mientras que los adultos, aproximadamente, de 2 a 4 veces. Generalmente,las ninfas que están en el quinto estadio son las que absorben la mayorcantidad de sangre, esto va algunas veces de 400 a 1000 por especie asocia-da al ser humano. Todos los estadios de ninfa, así como ambos sexos, pue-den sobrevivir durante períodos largos sin ingerir alimento, llegando en algu-nos casos hasta 11 meses.

Figura 3. Huevos eclosionados de Triatoma infestans.

Figura 4. Vista dorsal de una ninfa de triatomino.




3.4.4. Adulto (Fig. 5 y 6)

Los triatominos adultos se diferencian de la ninfa por sus alas anteriores yposteriores bien desarrolladas y por ser sexualmente maduros, con losgenitales completamente desarrollados.

La hembra copula sólo una vez y después de ser fecundada comienza lapostura, antes de los 30 días. En algunas especies pueden observarse hasta40 posturas que sobrepasan los 200 huevos.

Los adultos tienen un par de ocelos sensibles a la luz en la parte posterior dela cabeza, justo detrás de los ojos. Las ninfas no tienen estos ocelos.

Figura 6. Triatomino macho.

Figura 5. Triatomino hembra.




3.5. CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS DE LOS TRIATOMINOS

3.5.1. Cabeza

Es de forma variada. Algunos tienen la cabeza más o menos alargada y otrosalgo cónica. Se inicia en un ápice simple no dividido, que les permite darmovimientos notablemente libres; además, puede ser relativamente lisa oestar provista de numerosos tubérculos.

La cabeza está divida en dos regiones: una situada delante de los ojos deno-minada región anteocular, y otra posterior llamada postocular; la regiónanteocular suele ser más larga que la postocular (Figs. 7, 7a). La regiónanteocular presenta lateralmente dos surcos longitudinales: las genas quelimitan una región central estrecha y alargada a la cual se le denomina clípeo,y el epistoma; por detrás de los surcos y un poco por encima de las basesantenales se presentan dos pequeñas prominencias denominadas tubércu-los, procesos frontales.

La región postocular es relativamente corta, se estrecha hacia atrás para for-mar el cuello, y en ella se encuentran dos pequeños órganos casi redondea-dos, hialinos y transparentes que están situados lateralmente por detrás delos bordes superiores de los ojos, son los llamados ocelos, que en algunashembras ápteras pueden ser rudimentarios o estar ausentes.

El rostro, también denominado proboscis, es recto, alargado y delgado, for-mado por tres segmentos desiguales. Puede ser lanzado hacia delante, peroen reposo se encuentra debajo de la cabeza, llegando generalmente hasta eltórax. Su inserción se hace hacia delante de la región anteocular (Fig. 7a).

Las antenas están compuestas por cuatro segmentos, de los cuales el prime-ro es más corto que la cabeza. Se inician a ambos lados de la región anteocularen los llamados tubérculos anteníferos, por delante y a la mitad de los ojos,casi en la extremidad cefálica. Los ojos compuestos son prominentes y ante-ceden al par de ojos simples u ocelos que, por lo general, están colocados enprotuberancias, excepto en las ninfas, las cuales carecen de ellos.




3.5.2. Tórax

En esta sección la parte más visible es el protórax, el cual tiene una formatrapezoidal y su cara dorsal o pronoto se halla dividida en dos porciones: unaanterior o lóbulo anterior y otra posterior o lóbulo posterior (Fig. 8). La líneadivisoria entre los lóbulos generalmente se halla situada más próxima al ápiceque a la base y, lateralmente, existen unas expansiones más o menos promi-nentes llamadas ángulos anteriores o posteriores, según su posición. En losángulos anteriores o porciones laterales del lóbulo anterior, se encuentranunos pequeños salientes en forma de tubérculos o espinas denominadas

Figura 7. Vista dorsal de la cabeza.

A n te C líp e o

P o s t C líp e o

G en a

Yug o

Tu b é rcu lo A n te n ífe ro

O jo

A ce lo

C u e llo

R e g ió n A n te o cu la r

R e g ió n P o so cu la r

O celos

Tubércu lo A ntenífe ro

Yugo

C lípeo

G ena

Labro

Rostro O jo

Figura 7a. Vista lateral de la cabeza.




tubérculos pronotales anteriores, los cuales se dividen en: a) tubérculo distaly b) tubérculo lateral. Los ángulos posteriores o porciones laterales del lóbuloposterior carecen de salientes, pero su forma puede ser redondeada o aguda.

En la parte que se encuentra por detrás del pronoto existe una estructura deforma triangular llamada escutelo, que es corto, cuyo ápice es simple o mu-chas veces provisto de un proceso elevado agudo o romo (Fig. 8). Lateralmen-te, el tórax presenta las pleuras que están divididas en tres pares: pro, mesoy meta pleura (Fig. 8a). Ventralmente encontramos de delante hacia atrás elpro, meso y metasterno (Fig. 8b).

Ángu lo Anterolatera l

Tubé rcu loD is tal

Tubé rcu loLatera l

Ángu lo Humera l

L bulo Anterioró

Lóbulo Posterio r

Carena

Escute lo

Colla r

P ro ple ura E s cu telo

R o stro

A c etab u loA n terio r M e s op leu ra

M e tap leu raC o xa A nte rior

C oxa

C oxa An terior

M eso ste rn o

C oxa M edia

M eta ste rn o C oxa Po ste rior

P ro ste rn o

A ceta bulo

Figura 8a. Vista lateral de la cabeza,protórax y del escutelo.

Figura 8b. Vista ventral de la cabeza y el tórax.

Figura 8. Vista dorsal delprotórax y escutelo.




Las ninfas carecen de alas, mientras los adultos de ambos sexos general-mente son alados. Los hemiélitros o alas anteriores (Fig. 9) presentan unaspecto peculiar y cubren parcial o totalmente el abdomen, a la vez que pre-sentan diseños típicos. El corio (mitad basal) es mucho más grueso y oscuroque la membrana (mitad apical), la cual, por lo general, presenta manchas yestá provista de tres venas longitudinales que incluyen cuatro celdas.

Las alas posteriores tienen cinco venas longitudinales, son membranosas ymás cortas y finas que las anteriores (Fig. 9a).

Las patas caminadoras son largas y delgadas, con las márgenes internas delos fémures inermes o provistas de espinas. Las tibias anteriores y medias delos machos casi siempre tienen fosas esponjosas y sencillas. Los tarsosestán formados por tres segmentos y terminan en dos uñas (Fig. 9b).

Figura 9. Ala posterior.

Figura 9a. Ala anterior. Figura 9b. Pata anterior.




Vista ventral

EspiráculoRespiratorio

Esterrito VII

Esterrito VIII

Hipopigio

Morfología externa del macho Morfología externa de la hembra

Figura 10a. Vista ventral del extremo posterior del macho

Figura 11a. Vista ventral del extremo posterior de la hembra

Figura 10. Vista dorsal del extremo posterior del macho

Figura 11. Vista dorsal del extremo posterior de la hembra

Extremidad

recortada de la hembraExtremidad

redondeada del macho

Esterrito VI

Esterrito VII

Esterrito VIII

Conapórisisposterior

ClásperTertigio IX

Ala anterior Conexivos

3.5.3 Abdomen

Es alargado, más o menos ancho, con o sin marcas en su margen lateral alcual se le denomina conexivo. Consta de nueve segmentos en la hembra ydiez en el macho; el primer segmento es muy reducido, carece de cerdas ycasi siempre está desprovisto de otros apéndices abdominales. Los machos,en la parte extrema del abdomen, tienen una apariencia suavemente redon-deada, cuando se les mira desde arriba (Figs. 10 y 10a); mientras que en lashembras, la punta del abdomen tiene una apariencia lobulada o puntiaguda(Figs. 11 y 11a). Hacia los lados y ventralmente se encuentran los estigmas oespiráculos respiratorios.




SECCIÓN 4

4.1. ENCUESTA Y VIGILANCIA DE TRIATOMINOS

Procedimiento mediante el cual se determina la presencia de especímenesvivos o muertos de triatominos, rastros de ellos como heces, restos de coriónde los huevos y exuvias. Se determina también la tasa de infección natural porTrypanosoma cruzi.

Todos los triatominos son de origen silvestre y muchas especies aún seencuentran en sus hábitats naturales; otras especies ya están adaptadas alas viviendas, donde las personas y algunos animales domésticos existentesen el interior o exterior de las viviendas les sirven de alimento; además, lavivienda les brinda protección de las condiciones climáticas desfavorables.Otras especies se encuentran en proceso de domiciliación. Las adaptacionesde los triatominos mencionadas arriba, son producto del deterioro de su hábitatnatural, pues al no encontrar alimento suficiente, migran hacia los alrededoresde las viviendas o al interior de éstas, adaptándose a ellas, ya que encuentranlas condiciones favorables para obtener alimento y reproducirse.

4.2. MÉTODO PARA DETECTAR INFESTACIONES

Las infestaciones de las viviendas por los triatominos pueden ser demostra-das por el hallazgo de los triatominos o por los residuos del corión (cáscara),exuvias o huellas de heces. La secuencia normal de una inspección, ya seaen un área endémica o no endémica, es la siguiente:

1) Preguntar a las personas que habitan las viviendas si han visto o en-contrado triatominos o si han sido picadas mientras descansaban enel interior de sus viviendas. A las personas se les debe mostrartriatominos disecados.

2) Examinar los ambientes internos (intradomicil ios) y externos(peridomicilios) de la vivienda.

3) Buscar triatominos en ambientes extradomiciliarios (silvestres).

4.2.1. Informe de las personas

La persona encargada de realizar la vigilancia entomológica de los triatominos,debe preparar una buena muestra donde figuren todos los estadios deltriatomino. Ésta debe ser mostrada a los habitantes de las viviendas y referirsepreferentemente con el nombre que se le conoce localmente. En algunas




ocasiones, las personas de las viviendas no pueden reconocer al ejemplar,pero la mayoría de los pobladores de las zonas endémicas las reconocendiferenciándolos con los chinches de cama. Hay que tener presente, que laspersonas pueden confundir los reduvideos predadores y los fitófagos con loshematófagos.

Se debe tener en cuenta que si la vivienda se encuentra altamente infestada,las personas tendrán oportunidad de conocer de la existencia de lostriatominos, pero si el nivel de infestación es bajo, probablemente no se hayanpercatado de su presencia.

En otras ocasiones, los dueños de las viviendas mencionan que éstas estáninfestadas, cuando en realidad no lo están, con la finalidad de que el trata-miento con insecticidas pueda eliminar a otros insectos como cucarachas,pulgas, etc.

4.2.1.1. Evidencias indirectas de infestación

Las pruebas indirectas de infestación están dadas por las huellas de lasheces dejadas por los triatominos sobre paredes y artefactos tales comocuadros, almanaques colgados sobre las paredes, etc.; esto demostrará quelos triatominos están o han estado presentes en la vivienda. Las heces de lostriatominos tienen como característica la forma de goteo de cera de las velasy algunas veces presentan una mezcla de líneas de color negro o marrón muyoscuro. El hallazgo de estos rastros demuestra evidentemente la presenciade los triatominos, pero esto no significa que aún se encuentren en la vivien-da. Sin embargo, debemos tener presente que si los rastros son encontradosen cosas expuestas más recientemente como almanaques, por ejemplo, ellosserán la prueba de que aún existen en la vivienda.

Un método de encuesta bastante útil es el de colocar o clavar papeles de colorsobre las paredes de la vivienda, de esta manera se obtendrán los rastros deheces de los triatominos y así podremos, según las fechas, determinar supresencia reciente.

4.3. EXAMINAR LOS AMBIENTES INTERNOS (INTRADOMICILIOS) Y EXTER-NOS (PERIDOMICILIOS) DE UNA VIVIENDA

Los triatominos que se han adaptado al interior de las viviendas deberán sercolectados en los diferentes ambientes de la vivienda de la siguiente forma:a) manual, b) con sustancias irritantes, y c) sin uso de sustancias irritantes.




4.3.1. Captura manual

Preferentemente, en cada vivienda, la colecta debe ser realizada por una solapersona. En cada vivienda, el colector debe buscar a los triatominos durante15 a 30 minutos.

El colector debe buscar detenidamente los triatominos o detectar sus rastrosen sus refugios, ya sea grietas y hendiduras de las paredes, techos y corralesde animales, mediante el uso de pinzas y linternas. Adicionalmente, se busca-rá en las ropas, cajas, muebles, almanaques y otros lugares sombreados.Este tipo de captura presenta la desventaja de que no refleja la estructuraetaria de la población de triatominos, ya que algunos permanecen escondi-dos en grietas donde no puede llegar el hombre. Al finalizar la encuesta entodas las viviendas se realizará el conteo por estadios ninfales, adultos, porsexos y presencia de huevos, asimismo, se contabilizará el número deespecímenes por vivienda. Los ejemplares capturados se colocarán en vasoscolectores o también se pueden utilizar bolsas de polietileno de acuerdo conel ambiente de captura (cuyeros, dormitorios, cocina-comedor, etc.). En oca-siones son útiles las cajitas de fósforo vacías los vasos deben contener papelplegado que facilitará a los triatominos ocultarse de la luz. Esta misma meto-dología es empleada para colectar en ambientes peridomiciliarios.

El hecho de encontrar triatominos muertos, exuvias o restos de corión de loshuevos, es una clara indicación de que la vivienda ha estado infestada, lo queno indica infestación actual. Por otro lado, si sólo se colecta uno o dos ejem-plares vivos y no encontramos otras evidencias de infestación, esto podríaindicar sólo la presencia casual de los triatominos inmigrantes o de una ver-dadera infestación. Sin embargo, si se encuentran ninfas vivas en el interior oen los peridomicilios de las viviendas, esto será la prueba más clara de queexiste infestación.

Los triatominos capturados vivos se deben contar y mantener con vida dentrode los vasos colectores; éstos deberán estar rotulados indicando los datoscorrespondientes a la fecha, lugar y ambiente de captura, hasta el momentoque se realice la identificación y examine las heces para determinar la presen-cia de trypanosomatideos.

Para encuestar un área antes de la campaña de control, es muy importante laparticipación de los moradores, a quienes, luego de un entrenamiento previoa ésta, se les emplea para que realicen la actividad bajo supervisión. Antes derealizar la encuesta y la campaña de control, es necesario anotar en el croquisde la localidad, la posición de las viviendas, las casas donde se encontrarontriatominos vivos y aquéllas donde se encontró evidencias indirectas. Durante




la fase de ataque de la campaña de control con insecticidas, todas las casasdeberán ser rociadas, sin importar que estén infestadas o no. Por lo queposteriormente al tratamiento es necesario realizar un seguimiento para de-tectar la eficacia de los rociamientos y ver cuáles son las viviendas que conti-núan infestadas, con la finalidad de planificar y diseñar la toma de decisionescorrespondientes. Si se encuentran rastros de heces sobre las paredes des-pués del control, éstos no son indicadores de que persistan los triatominos,ya que no podría determinarse si fueron dejados antes o después del trata-miento. Además, si la infestación persiste, será probablemente en un nivelbastante bajo, y los triatominos vivos no podrán ser detectados en los 15 y 30minutos que dura la inspección de la vivienda.

4.3.2. Utilizando sustancias irritantes

Se emplea el procedimiento mencionado anteriormente y se aprovecha laacción de algunos piretroides o piretrinas. Mediante esta metodología seincrementa la captura de los triatominos, pero limita que los ejemplares cap-turados muertos sean usados en otros tipos de estudios.

Esta metodología es usada con frecuencia en localidades donde la densidadtriatomínica es baja; también se usa cuando se va a programar una encuestaentomológica previa al rociamiento de una zona y transcurrido uno o dos díasdel rociamiento se programa una encuesta posrociado, donde se recogerálos triatominos muertos después del rociado.

4.4. BUSCAR TRIATOMINOS EN AMBIENTES EXTRADOMICILIARIOS(SELVÁTICOS)

Realizar investigaciones de triatominos en el ambiente silvestre es importante para:

• Conocer los ecotopos de los triatominos.

• Conocer la interrelación trófica en el hábitat.

• Evaluar el desplazamiento de los triatominos y las tendencias de dispersión.

• Evaluar la capacidad de domiciliación que tienen algunos triatominos alinvadir viviendas humanas o peridomicilios existentes en el área.

• Estudiar el comportamiento de las especies en sus ecotopos.

• Conocer sus enemigos naturales en el micro o macrohábitat.

Para ello se emplean los siguientes procedimientos:




4.4.1. Expulsión de los ejemplares del interior de su microhábitat medianteprocedimientos químicos

Para ello se emplean sustancias químicas movilizantes y repelentes, por ejem-plo las piretrinas o los piretroides; el inconveniente es que muchos ejempla-res mueren al ser capturados y esto limita el estudio posterior.

4.4.2. Disección de hábitats

Ha sido utilizado por muchos investigadores. Puede comprender desde des-hacer un pequeño nido de aves hasta la disección de una palmera o arbustos.

La disección de nidos se emplea para el estudio del área poblacional, delciclo biológico en el hábitat natural, y además para conocer el hábitat de lostriatominos silvestres; asimismo, nos permite determinar los refugios de al-gunos vertebrados que favorecen la presencia de triatominos.

4.4.3. Trampas sin cebo animal

Se basa en el uso de cajas de cartón o madera con agujeros de entrada y controzos de papel para impedir su salida, o también se puede emplear cañas debambú que serán colocadas en ambientes como bosques o cuevas. Lastrampas son utilizadas con éxito cuando se propone realizar encuestas domi-ciliarias posrociado.

4.4.4. Trampas con cebo animal

Es uno de los métodos más utilizados por sus excelentes resultados. Una deellas consiste en una caja de madera con dos compartimentos, en uno de losextremos se coloca un animal de sangre caliente (conejo, gato, perro, gallinao rata) y en el otro extremo se colocan embudos pequeños hacia adentro quefacilitarán la entrada de los triatominos, pero impedirán la salida. Losvertebrados deberán estar separados de los triatominos capturados median-te el uso de una tela metálica con orificios pequeños.

4.4.4.1. Otro tipo de trampa consiste en una simple jaula rodeada de papel otela adhesiva, donde quedan adheridos los triatominos que se aproximan alos vertebrados para alimentarse.

4.4.5. Atracción mediante fuente luminosa

Se han empleado lámparas que emiten luz ultravioleta. Éstas son de utilidadrestringida, pues generalmente atraen triatominos adultos machos.




4.4.6. Marcación, suelta y recaptura

Esta técnica nos brinda información cuantitativa. Para el marcado de los in-sectos se pueden emplear polvos fosforescentes de diversos colores eisótopos radioactivos, éstos sólo son aplicados a triatominos adultos y tienenuna duración aproximada de 40 días.

4.5. EQUIPOS PARA CAPTURAR TRIATOMINOS

Cada laboratorio que pretende realizar o está desarrollando vigilanciaentomológica en triatominos o intenta realizar trabajos de investigación contriatominos debe tener o adquirir los siguientes instrumentos:

• Pinzas rectas, largas y metálicas de 20 cm.

• Alambre grueso de 80 cm de largo.

• Linterna.

• Cajas de “tecnoport” (poliestireno).

• Vasos colectores.

• Bolsas plásticas medianas.

• Papel periódico plegado.

• Cinta “maskingtape” (cinta adhesiva).

• Ficha de encuesta.

4.6. ENVÍO DE TRIATOMINOS

Los triatominos capturados en las localidades de muestreo deben llegar vivosal establecimiento de salud o al lugar donde se realizará la identificación ydeterminación si están o no infectados con trypanosomatideos, para ello seusarán los vasos colectores.

4.6.1. Vasos colectores

Estos vasos deben ser de preferencia de plástico y de boca ancha de 13 cm delargo x 12 cm de diámetro. La tapa del vaso debe ser a presión. Ésta se debehacer una abertura de 8 cm de diámetro, la cual debe estar cubierta por unaorganza. Es recomendable que se coloque papel filtro, periódico o cartulina




Si sólo se capturan adultos, en el vaso se colocará de 10 a 12 ejemplares,pero si los ejemplares capturados corresponden a estadios inmaduros (nin-fas) en cada vaso el número será de entre 15 y 20 ejemplares.

La tapa se debe colocar a presión, y además debe asegurarse con cintaadhesiva la parte superior del vaso con parte de la tapa; esto se hace con lafinalidad de que los vasos no logren destaparse con el movimiento y evitar quelos triatominos puedan salir.

Cada vaso deberá rotularse con los siguientes datos de captura: localidad,distrito, provincia, departamento, ambiente de captura (peri, intra oextradomicilio, especificando el lugar, por ejemplo corral de aves, dormitorio,cuyero, etc.), área rural o urbana, altitud, hora y fecha de captura y nombre (s)de la (s) persona (s) que realizó la captura. Estos datos deben ser escritos conlápiz en papel o sobre una cinta adhesiva, para luego ser adherida en la parteexterna del vaso.

con dobleces en el interior de los vasos, los cuales le brindarán mayor área dereposo, permanecerán más frescos y tendrán oscuridad (Fig. 12).

Figura 12. Vaso colector.




Los vasos deben ser colocados de costado, unos sobre otros, colocandopapel higiénico, servilletas u otro material entre ellos para que les sirva de“colchón”. Éstos serán colocados de costado con la finalidad que los triatominostengan mayor espacio para desplazarse; también, se pueden colocar en cajasde cartón.

La caja de “tecnopor” o de cartón debe ser colocada en el interior de otra cajagrande que la protegerá de los golpes, en la tapa externa de ésta se deberotular la dirección del establecimiento de salud o la del laboratorio referencialregional o del Instituto Nacional de Salud; además, se escribirá en los costadosy lugares visibles: FRÁGIL, MATERIAL BIOLÓGICO SIN VALOR COMERCIAL.

4.7. INDICADORES ENTOMOLÓGICOS

Las condiciones de riesgo de transmisión vectorial domiciliaria de la enferme-dad de Chagas son:

a) Que el vector esté presente.

b) Que el vector esté infectado.

c) Que el vector colonice la habitación humana.

Estas condiciones pueden ser traducidas en indicadores que miden el riesgo,los cuales pueden ser categorizados en:

4.7.1. Indicadores Operacionales

Sirven para la toma de decisión y tipo de conducta a seguir ante la presenciadel vector. Se debe tener presente que, si el objetivo es eliminar al vector, lapresencia de éste es condición suficiente para intervenir una zona. Tenemoslos siguientes índices:

4.7.1.1. Índice de Dispersión

Nos permite conocer el grado de concentración y la distribución del vectordentro de una determinada área o lugar:

ID % = Nº de localidades infestadas con triatominos

x 100 Nº de localidades examinadas




4.7.2. Indicadores de seguimiento y evaluación. Tenemos los siguientes:

4.7.2.1. Infestación domiciliaria

En función de la limitada sensibilidad de los métodos de detección por bús-queda activa del vector (hora/hombre) en áreas en que se usa esta metodolo-gía, debe considerarse a la localidad como unidad mínima de intervención. Encaso de usar métodos permanentes de detección, puede que la unidad deintervención sea la vivienda o casa.

ID % = Nº de viviendas infestadas con triatominos

x 100Nº de viviendas inspeccionadas

4.7.2.2. Índice de Infestación Intradomiciliaria

III % = Nº de intradomicilios infestados con triatominos

x 100Nº de intradomicilios inspeccionados

4.7.2.3. Índice de Infestación Peridomiciliaria

IIP % = Nº de peridomicilios infestados con triatominos

x 100 Nº de peridomicilios inspeccionados

4.7.2.4. Índice de Infección Natural (por T. cruzi)

ITT % = Nº de triatominos Infectados con Trypanosoma cruzi

x 100 Nº de triatominos examinados

4.7.2.5. Índice de Colonización

IC % = Nº de casas con ninfas de triatominos

x 100 Nº de casas positivas con triatominos

4.7.2.6. Índice de Densidad

ID % = Nº de triatominos capturados

Nº de viviendas inspeccionadas x 100




Estos indicadores nos informan sobre el avance y permanencia de los logrosa obtener, permitiendo monitorizar indirectamente las actividades, razón por lacual deben ser usados regularmente.

4.7.3. Indicadores del sistema de vigilancia (seguimiento)

Estos indicadores serán usados en la validación del sistema de vigilancia,(evaluación del programa). Son los siguientes:

4.7.3.1. Índice de Cobertura

IC = Nº de localidades con infestación anterior por triatominos con vigilancia instalada

x 100 Nº de localidades con infestación anterior por triatominos

4.7.3.2. Índice de Producción

a) Nº de unidades de notificación productivas x 100

Nº de unidades de notificación instaladas

b) Nº de unidades con notificación negativa x 100

Nº de unidades de notificación instalada

4.7.3.3. Calidad de la Producción

a) Nº de localidades positivas por vestigios de triatominos x 100

N° de localidades con notificación positiva

b) Nº de localidades positivas por captura o captura de triatominos x 100

Nº de localidades con notificación positiva

c) N.º de local. posit. con captura de triatom. de una especie particular x 100

N.º de localidades con notificación positiva




d) Nº de localidades tratadas x 100

Nº de localidades notificadas positivas

e) Nº de viviendas tratadas x 100

Nº de viviendas notificadas positivas




SECCIÓN 5

5.1. IDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS

La persona que se encargará de la identificación de los triatominos debe estarcapacitada. Él o ella debe obtener referencias bibliográficas de las descripcio-nes originales u obtener buenas copias; asimismo, debe tener especímenesnotificados para su jurisdicción, los cuales deben estar montados en alfileresy conservados en cajas entomológicas que servirán para compararlas con losrecién obtenidos.

A continuación se adjunta una clave para los triatominos del Perú.

5.2. CLAVE TAXONÓMICA PARA TRIATOMINOS DEL PERÚ

La clave taxonómica que se presenta fue elaborada por Elliot A., Guillén Z.,Nakashima I., investigadores del Instituto de Medicina Tropical “Daniel A.Carrión” de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, y publicada en laRev Per Ent 1988, 31:18-20, con el título de: “Identificación de los ChinchesTriatominos (Hemíptera, Reduviidae) conocidos del Perú”. Dicha clave es prác-tica y didáctica para personas que se inician en los estudios de los triatominosdel Perú.

1. Ocelos en elevaciones bien destacadas en la región postocular de la cabeza ........ 4

Ocelos no elevados …………………............................................................... 2

2. Cabeza alargada, no muy convexa, vista de perfil, genas que se extiendenmás allá del clípeo, tubérculos anteníferos lejos de los ojos ....................... 3

Cabeza ovalada, pilosa, muy convexa; genas que no sobrepasan el clípeo;tubérculos anteníferos próximos a los ojos …............................ Cavernícolapilosa Barber, 1937.

3. Primer segmento del rostro tan largo como el segundo, escutelo con pro-cesos triangulares en su base, segmentos dorsales del conexivo con plie-gue longitudinal ....................................................................................... Belminusperuvianus Herrer, Lent, Wygodzinsky, 1954.




Primer segmento del rostro más corto que el segundo, escutelo triangular;sin procesos laterales en su base, conexivo dorsal sin pliegue longitudinal.Fémur sin espina, tarsos muy cortos: 1/5 de la tibia ..............................Microtriatoma tridinadensis Lent, 1951.

4. Cabeza cilíndrica mayor que el doble del ancho, antenas implantadas próxi-mas al ápice de la cabeza ........................................................................... 5

Cabeza con antenas implantadas lejos del ápice de la cabeza ............... 7

5. Cabeza y patas con manchitas irregulares dándoles aspecto jaspea-d o .................................................................................................................. 6

Cabeza y patas sin manchitas y con escasos dibujos regulares, bandalongitudinal clara que se extiende desde el clípeo al cuello ………….…..Rhodnius robustus Larrousse, 1927.

6. Conexivo con manchas grandes oscuras que distalmente terminan en pun-tas longitud 15 - 22 mm …….................…………… Rhodnius pictipes Stal,1872.

Conexivo con manchas oscuras basales sin puntas, longitud de 12-15mm ..................................................... Rhodnius ecuadoriensis Lent y León,1958.

7. Cabeza relativamente corta y ancha, tubérculos anteníferos insertados cer-ca del borde anterior de los ojos, cabeza y cuerpo lampiños ................... 8

Cabeza cilíndrica, tubérculos anteníferos no cercanos a los ojos, el rostroalcanza el prosterno que presenta surco estridulatorio ............................ 12

8. Apéndice posterior del escutelo alargado, subcilíndrico, estrechadoaxialmente .................................................................................................... 9

Apéndice posterior del escutelo corto, redondeado, cónico o truncadoapicalmente ................................................................................................ 10




9. Especímenes casi totalmente negros, conexivo con pequeña mancha rojaen los ángulos póstero laterales........................................... Panstrongyluschinai Del Ponte, 1929.

Especímenes de color claro, conexivo con manchas en el tercio anterior,vientre con mancha central y 2 laterales ...................... Panstrongylusgeniculatus Latreille,1811.

10. Yugo romo, conexivo con mancha en forma de una “F”....................Panstrongylus rufotuberculatus Champion, 1899.

Yugo en punta ............................................................................................. 11

11. Tibias negras con manchita amarilla subbasal ..................... Panstrongyluslignarius Walker,1873.

Tibias totalmente negras ….......……......... Panstrongylus herreriWygodzinsky, 1948.

12. Apéndice posterior del escutelo en forma de espina fuerte, larga de puntaafilada; primer segmento del rostro tan largo como el segundo ............ 13

Apéndice posterior del escutelo diferente, primer segmento del rostro máscorto que el segundo ................................................................................. 14

13. Lóbulo anterior del pronoto con dos espinas, ángulo humeral espi-noso....................................................……........ Eratyrus mucronatus Stal, 1859.

Lóbulo anterior del pronoto con dos tubérculos, ángulo humeral terminadoen tubérculo ……..………………................................. Eratyrus cuspidatusStal, 1859.

14. Pronoto negro uniforme ............................................................................. 15

Pronoto oscuro con manchas ................................................................... 16

15. Patas oscuras, conexivo con manchas oscuras en el tercio anterior, coriónamarillo y mancha central negra ............................................... Triatomadimidiata Latreille, 1811.




Patas oscuras, trocánter, base del fémur y base de la tibia, amarillos,manchas del conexivo, incluyen la sutura ...............…………............. Triatomainfestans Klug, 1834.

16. Patas oscuras uniformes .......................................................................... 17

Patas negras con el ápice del fémur y base de la tibia con estrecho anilloamarillo, conexivo con mancha central oscura...................... Triatomanigromaculata Stal, 1859.

17. Cabeza oscura, pronoto anterior con margen lateral rojo. Conexivo con unabanda central oscura ….............……………....... Triatoma carrioni Larrousse,1926.

Cabeza marrón rojiza con dos bandas longitudinales centrales de colornegro, que parten de los tubérculos anteníferos hasta el surco postocular,pronoto anterior con una banda rojiza central y dos sublaterales cortas.Mancha del conexivo no cubre todo el segmento ………………...................……..Hermanlentia matsunoi Fernández, 1988.

Véase Anexo C, para diferenciar las estructuras de algunas especies (Figu-ras. 13-21).




SECCIÓN 6

6.1. MONTAJE DE EJEMPLARES DE TRIATOMINOS EN ALFILERES

Una vez identificados los triatominos (adultos y estadios inmaduros), es nece-sario que dichos ejemplares sean conservados ya que servirán de referencia.Para el montaje de los triatominos se debe seguir los siguientes pasos:

1° Colocar los triatominos vivos en un envase de vidrio de boca ancha con tapade rosca hermético (15 cm de alto x 10 cm de ancho), agregar una pequeñaporción de algodón embebido con acetato de etilo, el cual permaneceráentre 15 y 30 minutos.

2° Transcurrido el tiempo, retirar el algodón; asimismo, cada ejemplar debeser colocado en el tablero ajustable para insectos, con la finalidad de exten-der adecuadamente las patas, la probóscide y las antenas; permanecien-do en ella aproximadamente 12 horas.

3° Se debe seleccionar el número apropiado de los alfileres entomológicos(preferentemente para los adultos de los géneros: Triatoma y Panstrongylus)que pueden ser el número 2 ó 4; mientras que para los del género Rhodnius,como para los otros géneros existentes y para los estadios inmaduros(ninfas) serían los números 0, 1 ó 2.

4° El triatomino será colocado sobre un bloque de “tecnopor” pequeño y alnivel del extremo inferior derecho del pronoto se debe introducir el alfilerseleccionado hasta la tercera parte. Realizado esto, se retira el alfiler del«tecnopor» y se introduce nuevamente en el centro del bloque de cartulinade 10 mm x 5 mm, donde deben estar escritos con tinta china el nombrecientífico de la especie y el sexo; seguidamente se introduce el alfiler enotro bloque de cartulina de 6 mm x 15 mm, donde se escribe el código deregistro del ejemplar para el laboratorio o la institución respectiva; yfinalmente, introducir a otro bloque de cartulina de 10 mm x 20 mm, dondese consignarán los datos de captura del triatomino. La distancia entre elejemplar y el primer bloque de cartulina debe ser de aproximadamente4 mm, y así sucesivamente del primer bloque de cartulina con el segundo yel segundo con el tercero (Fig. 22).




Figura 22. Montaje de triatominos en alfileres.




SECCIÓN 7

7.1. ESTUDIO DE INFECCIÓN NATURAL

Para determinar si un triatomino está infectado por trypanosomatideos, sedeben seguir los siguientes pasos:

7.1.1. La persona que va a manipular el triatomino debe usar guantes,mascarillas y guardapolvo. La manipulación se tiene que realizar en una cabi-na de flujo laminar y si no se tiene, es necesario adaptar un mechero Bunseno de alcohol. Además, se debe tener un envase con lejía al 5%.

7.1.2. Separar todos los triatominos muertos encontrados en los vasos colec-tores, después identificar la especie a la que pertenece, dividir por sexo yestadios, y luego continuar con los ejemplares vivos.

7.1.3. Al ejemplar seleccionado se le coge del tórax con una pinza, luego frotarla parte dorsal y ventral del abdomen con un hisopo humedecido en soluciónsalina con antibiótico y colocarlo en posición dorsoventral sobre una láminaportaobjeto limpia, a unos 0,5 cm de la parte final del abdomen, después dejarcaer dos gotas de solución salina. Luego, con otra pinza limpia presionar en eloctavo y noveno segmento abdominal con la finalidad de que expulse lasheces. Con otra pinza limpia, realizando movimientos suaves en un solo sen-tido, homogeneizar las heces expulsadas con la solución salina.

7.1.4. Sobre la muestra se coloca un cubre objeto limpio, para ser observadoal microscopio con aumento de 10X, depués se pasa a 40X. La observacióndebe iniciarse en uno de los extremos de la muestra, luego seguir en una soladirección ya sea en forma longitudinal u horizontal; una vez llegada a la partefinal de la muestra se avanza al campo siguiente y se retrocede, siguiendo dela misma forma hasta observar toda la muestra.

7.1.5. Terminada la observación se retira el cubreobjeto. Si la muestra espositiva se deja secar al medio ambiente, luego es enumerada y rotulada conlos datos del triatomino capturado incluyendo la fecha de la observación.

7.1.6. Una vez que la muestra ha secado, es necesario cubrirla con unas gotasde alcohol metílico y secar al medio ambiente. Si la observación se realiza en elcampo, es necesario fijar la muestra y luego depositarla en los lamineros. Paraposteriormente colorearlas en el puesto o centro de salud más próximo.




7.1.7. Es recomendable que la fijación y la coloración de la muestra se realiceen el mismo día. Si no es posible colorearla el mismo día, la lámina serácolocada en una caja pequeña de “tecnopor” para ser coloreada al díasiguiente.

7.1.8. La coloración de la muestra se realizará de dos maneras, según el niveldel laboratorio: a) Cubrir toda la muestra con el colorante Giemsa durante 20minutos; b) La lámina debe ser introducida en un Koplin conteniendo el colo-rante Giemsa que cubrirá toda la muestra durante 20 minutos.

7.1.9. Transcurrido el tiempo se debe lavar la lámina coloreada, con la finali-dad de eliminar el exceso de colorante. Dejar secar al medio ambiente.

7.1.10. La muestra debe observarse primeramente a 10X, con la finalidad deobservar el campo, después a 40X y finalmente a 100X, previamente se debeañadir aceite de inmersión.

7.1.11. Anotar todos los datos en la ficha respectiva adjunta.

7.1.12. Las pinzas y los cubreobjetos utilizados deben ser colocados en elenvase que contenga lejía al 5%, en caso contrario pasados por el fuego delmechero.

7.1.13. Todos los triatominos donde se han observado trypanosomatideosdeben ser depositados en un envase para posteriormente ser incinerados;mientras que los negativos, si permanecen en buenas condiciones, dejar-los en el insectario para posteriormente ser revisados por segunda vez. Ysi continúan siendo negativos, se les da muerte colocando todos los ejem-plares en un envase de vidrio de boca ancha y dejando caer algodón embe-bido con cloroformo.

7.2 EXAMEN DE TRIATOMINOS PARA INVESTIGAR TRYPANOSOMA CRUZI OTRYPANOSOMA RANGELI

7.2.1. El examen individual y completo de los triatominos comprende el exa-men sucesivo de:

1. Hemolinfa.

2. Glándulas salivales.

3. Intestino posterior.




Para realizar el examen, es necesario que los triatominos vivos se depositenen envases de vidrio de boca ancha, luego se adiciona una porción pequeñade algodón embebido en acetato de etilo durante 15 minutos.

Al momento de la disección, se obtiene fragmentos del cuerpo del insecto, losque deben ser depositados en un envase con lejía al 5% o fenol al 5 %.

A continuación se mencionan algunas pautas para realizar los exámenes entriatominos y observar trypanosomatideos en hemolinfa, gándulas salivales eintestino:

7.2.1.1. Examen de hemolinfa. Seguir los siguientes pasos:

a) Sobre un portaobjeto limpio, sostener el triatomino a la altura del tórax conuna pinza.

b) Con el bisturí cortar una pata a nivel del extremo distal del fémur.

c) Después presionar suavemente el dorso ventralmente a nivel del tórax.

d) Dejar caer gotitas de hemolinfa sobre un portaobjeto, luego colocar elcubreobjeto al microscopio y observar con aumento de 10X y 40X.

7.2.1.2. Examen de glándulas salivales

a) Anestesiar al triatomino.

b) Colocar el triatomino ventralmente sobre un portaobjeto limpio.

c) Con el bisturí cortar el conexivo por sus dos extremos.

d) Se levanta suavemente el exoesqueleto dorsal completo con pinzas oestiletes de disección.

e) Con estiletes de disección extraer suavemente las glándulas salivales(que son de color rojo y trilobular).

f) Preparar un portaobjeto limpio, en el centro colocar una gota de soluciónsalina y sobre ella depositar las glándulas salivales.

g) Luego colocar el cubreobjeto y observar al microscopio con aumentos de10X y 40X.

7.2.1.3. Examen de intestino posterior

a) Realizar los pasos del examen de glándulas salivales desde “a” hasta “d”.

b) Con una pinza de punta fina se coge el recto y se desliza el intestino(postmesenterio, la región del píloro y la ampolla rectal) suavemente deizquierda a derecha.




c) Cortar el intestino y depositar en un portaobjeto conteniendo unas gotasde solución salina.

d) Colocar sobre el intestino un cubreobjeto.

e) Observar al microscopio con aumentos de 10X y 40X.




SECCIÓN 8

8.1. ADAPTAR COLONIAS DE TRIATOMINOS AL LABORATORIO

8.1.1. La crianza de triatominos en los laboratorios es de gran utilidad, puesse usan para realizar diversos estudios, tales como: conocer el ciclo biológi-co, realizar xenodiagnóstico, conocer la preferencia alimenticia, realizar estu-dios genéticos, así como para evaluar la persistencia de los insecticidas, etc.

8.1.2. El insectario puede ser una habitación pequeña con cámara climatizadacerrada herméticamente, con paredes lisas y aptas para el lavado. Dichoinsectario debe tener estantes de fácil limpieza donde se colocarán recipien-tes conteniendo diferentes estadios del triatomino por separado. Es necesa-rio prevenir la invasión de hormigas, cucarachas u otros depredadores quepuedan afectar a la colonia de triatominos. No se debe usar insecticida en elambiente del insectario; la temperatura del insectario debe estar entre 24 ºC y27 ºC y la humedad relativa entre 70% y 75%. Es necesario que la personaencargada del insectario registre todos los días la temperatura y humedadrelativa en un cuaderno de notas.

8.1.3. Los recipientes deben ser preferentemente de vidrio o policarbonato deboca ancha, transparente de 30 cm de largo por 18 cm de ancho, y autoclavables.En la base y pared del recipiente se debe colocar papel filtro o secante paraabsorber las deyecciones de los triatominos. En el interior de cada recipientese debe colocar papel o cartulina preferentemente de color negro y plegado enforma vertical de menor tamaño que la altura del recipiente. La tapa del reci-piente debe ser hermética, pero con un agujero que debe ser forrado interna-mente con organza.

8.1.4. Para la alimentación de los triatominos, se emplea una variedad deaves, como: pollos, gallinas, palomas; también se pueden utilizar ratonescriados en laboratorio, etc. Al momento de la alimentación es necesario tenerpresente que el animal no debe moverse, si el animal es de tamaño regular esnecesario sedarlo, administrando clorhidrato de ketamina en dosis que varíaentre 10 y 60 mg/kg. La alimentación de los triatominos será por un periodo de30 minutos.




SECCIÓN 9

9.1. XENODIAGNÓSTICO

9.1.1. El xenodiagnóstico es una técnica introducida por Brumpt en 1914, queviene a ser un procedimiento en el que se utiliza triatominos para detectar lainfección por Trypanosoma cruzi en el hombre y otros mamíferos.

9.1.2. Para el xenodiagnóstico se emplean estadios inmaduros de triatominos,especialmente ninfas criadas en el laboratorio del III y IV estadio; si no setuvieran estos estadios, se pueden usar ninfas del II o V estadio; las cualesdeben estar libres de infección y no deben de haber ingerido sangre unos 25a 40 días. En el laboratorio, se examina el contenido rectal del insecto a partirde los 15 días después de la alimentación –su alimentación ha sido sobreaves (gallinas)– con la finalidad de buscar Trypanosoma sp. que se hayanmultiplicado en el intestino del insecto.

9.2. A continuación, se mencionan los pasos a seguir:

9.2.1. La persona encargada de aplicar este método debe usar guantes qui-rúrgicos, tener cajas de madera cilíndrica de 3 cm de altura x 3,5 cm de diáme-tro, cuyo interior debe ser forrado con papel de filtro que sirve como absorben-te de las materias fecales y para evitar el exceso de humedad, asimismo paramantener colonias de triatominos adaptados al laboratorio.

9.2.2. En la caja de madera cilíndrica (Fig. 23), se debe colocar entre 6 y 10ninfas del III o IV estadio, la abertura de la caja debe estar cubierta con unaorganza sujetada con un par de bandas elásticas; esto se hace con la finali-dad de facilitar la respiración y la alimentación de las ninfas.

9.2.3. La abertura de la caja cilíndrica cubierta con la organza se aplica sobre elmiembro superior del paciente con sospecha de tener Trypanosoma en sangrecirculante, preferentemente en la parte anterior del antebrazo, ésta deberá es-tar sujeta al antebrazo con una banda elástica o cinta engomada, permane-ciendo en esa posición entre 20 y 30 minutos (Fig. 24).




9.2.4. Durante el tiempo expuesto, como las ninfas están ávidas de alimentar-se, van a obtener sangre del antebrazo de la persona.

9.2.5. Una vez transcurrido el tiempo, los triatominos alimentados (que hanaumentado de volumen) serán transferidos a nuevos vasos colectores, encuyo interior debe colocarse previamente papel plegable, los cuales se

Figura 24. Xenodiagnóstico.

Figura 23. Caja de madera cilíndrica.




transportarán al insectario que debe tener las condiciones de temperatura yhumedad relativa ambiental adecuadas, donde se las mantendrán sinrealimentarlas.

9.2.6. Transcurridos 15 días después de la alimentación se deben obtener lasmuestras a examinar, en busca de formas móviles de Trypanosoma cruzi;éstas se obtendrán mediante diversas metodologías: a) Por presión abdomi-nal suave para lograr una gota de deyecciones (deposiciones u orina delinsecto), lo que debe repetirse a los 30, 60 y 90 días cuando son negativas,b) Por presión abdominal entre los 30 y 45 días, y en caso que resulte negati-va, repetir a los 30 y 60 días y extraer el intestino de la ninfa, el cual se trituraráy homogeneizará.




SECCIÓN 10

10.1. LISTA DE ESPECIES EN EL PERÚ

Hasta el momento se han notificado 18 especies de triatominos en el Perú. Dealgunas de ellas se amplía la distribución geográfica, otras abarcan alrededorde 5 departamentos y otras de distribución restringida. Los triatominos hansido capturados en ambientes intra, peri y extradomicilios de zonas urbanas yrurales de los valles occidentales e interandinos, así como también en zonasde la selva alta y selva baja. A continuación, se mencionan las especies notifi-cadas hasta el momento para el Perú:

• Triatoma infestans (Klug, 1834)

• Triatoma dimidiata (Latreille, 1811)

• Triatoma carrioni (Larrousse, 1926)

• Hermanlentia matsunoi (Fernández-Loayza, 1989)

• Triatoma nigromaculata (Stal, 1872)

• Panstrongylus herreri (Wygodzinsky, 1948)

• Panstrongylus chinai (Del Ponte, 1929)

• Panstrongylus rufotuberculatus (Champion, 1899)

• Panstrongylus geniculatus (Latreille, 1811)

• Panstrongylus lignarius (Walker, 1873)

• Rhodnius ecuadoriensis (Lent y León, 1958)

• Rhodnius pictipes (Stal, 1872)

• Rhodnius robustus (Larrousse, 1927)

• Belminus peruvianus (Herrer, Lent & Wygodzinsky, 1954)

• Microtriatoma trinidadensis (Lent, 1951)

• Eratyrus mucronatus (Stal, 1859)

• Eratyrus cuspidatus (Stal, 1859)

• Cavernicola pilosa (Barber, 1937).




Ahora bien, se mencionarán algunas especies de triatominos que estánincriminados como vectores de Trypanosoma cruzi y Trypanosoma rangeli:

10.2. Triatoma infestans (Klug, 1834)

Especie considerada como vector principal de Trypanosoma cruzi en el surdel Perú, es una especie doméstica (Fig. 25). Al realizar encuestasentomológicas se obtuvieron índices elevados de densidad, infestación domi-ciliaria y niveles de infección por T. cruzi.

Tiene una distribución geográfica en los vallles occidentales de la costa surdel Perú, desde los departamentos de Ica, Arequipa, Moquegua y Tacna; yvalles interandinos de Ayacucho (Provincia de Paucar de Sarasara) y Apurímac(a lo largo del valle Pachachaca). Se ubica geográficamente en el área entrelos paralelos 13º y 18º 20" latitud sur.

En la zona de distribución geográfica, la altitud se circunscribe desde el niveldel mar hasta los 3500 msnm.

Figura 25. Un espécimen macho de T. infestans.




Herrer menciona que esta especie ingresó al Perú en las dos últimas déca-das del siglo XIX procedente de Chile mediante una dispersión pasiva, comopor ejemplo: traslado de enseres domésticos y animales. En 1958 fue regis-trado en Lima.

Los índices más elevados de infección domiciliaria se asocian a las áreasdonde se dedican a la crianza del cuy (Cavia porcellus), estos animales sonconsiderados como excelentes reservorios del T. cruzi. Las viviendas de es-tas áreas están construidas con adobe, quincha o estera; y en los ambientesperidomésticos las personas encierran o crian porcinos, bovinos, caprinos,ovinos y aves, los cuales crean condiciones favorables para que el triatominopermanezca en la vivienda.

10.3. Panstrongylus herreri (Wygodzinsky, 1948)

Especie considerada importante en la transmisión de T. cruzi en la zonaNororiental del Perú (Fig. 26). Está circunscrita a los valles interandinos de losríos: Pucará, Chinchipe, Marañón y Huallaga, se incluyen a las provincias deSan Ignacio, Jaén, Cutervo y Santa Cruz (Cajamarca); Bagua, Utcubamba,Luya, Rodríguez de Mendoza (Amazonas); Lamas, Moyobamba, Rioja (SanMartín) y La Mar (Ayacucho), hasta el momento no se han notificado en losvalles occidentales del norte.

Estudios realizados por diversos investigadores, desde su descripción hasta lafecha, mencionan que es una especie de hábitos domiciliarios en mayor por-centaje, pero también se les encuentra en ambientes peri y extradomiciliariosde la región de la selva húmeda entre los 400 y 1650 msnm.

Figura 26. Un espécimen macho de P. chinai.




El grado de domiciliación está asociado a la convivencia del hombre con el cuyy otros animales domésticos; asimismo, a la presencia de animales silves-tres que ocasionalmente se acercan a las viviendas construidas con adobe,quincha o madera, tales como: Didelphys sp., Rattus norvegicus, Rattus rattus,Akodon sp, etc. En esta zona, a este especie de triatominos la conocen con elnombre de “chinche grande”.

En algunas zonas de Utcubamba (Amazonas) el índice de infestacióndomicliaria supera el 55% y el índice de trypano-triatomino sobrepasa el 45%(Cáceres et al., 2002).

10.4. Rhodnius ecuadoriensis (Lent y León, 1958)

Especie que se distribuye en la zona noreste del Perú (Tumbes, Piura,Lambayeque, Cajamarca, La Libertad y Ancash).

En 1970, Herrer menciona la infección con T. rangeli en ejemplares captura-dos de la región nororiental. En 1972, en Piura se encontró ejemplares de estaespecie infectados con T. cruzi y T. rangeli; y en Cajamarca, con T. rangeli. Enla zona de Chicama se han encontrado ejemplares infectados por T. rangeli.

Náquira et al., (1972) consideran a esta especie como domiciliaria y silvestre(Fig. 27).

Sus hábitats preferidos son los gallineros y palomares, pero también se le haencontrado en palmeras (Elaeis guineensis). En Ecuador, se le ha encontradoen nidos de marsupiales.

En ambientes intradomiciliarios se han capturado sólo ejemplares adultos;pero también es frecuente encontrarlos próximos a los lugares donde encie-rran cuyes, asimismo, en los huecos de los árboles.

Figura 27. Espécimen de R. ecuadoriensis.




SECCIÓN 11

11.1 BIBLIOGRAFÍA

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Establecimiento de Salud: 1. Datos de captura (Nivel local):

Procedencia Nº de muestra

Fecha de captura

Altitud msnm Provincia Distrito Localidad

N° de ejemplares

Lugar de captura

Fecha de remisión Responsable de la captura _______________________________________________________________________ 2. Laboratorio regional / subregional (Nivel regional):

Estadios

Adultos Ninfas

Total positivos a T. cruzi

ITT % Especie

identificada Nº de muestra

Macho Hembra I II III IV V

Fecha de observación: Responsable del laboratorio __________________________________________________________ 3. INS- Diagnóstico confirmatorio:

Nº de muestra

Provincia Distrito Nº de

ejemplares examinados

Especie identificada

Ejemplares positivos a

T. cruzi ITT %

Fecha de examen Responsable __________________________________________________________

ANEXO B

DISA / Subregión de Salud: UTES / Ubass:

Establecimiento de Salud:

ENVÍO DE ESPECÍMENES DE TRIATOMINOS




ANEXO C

Se ilustra algunas estructuras diferenciales de los triatominos peruanos,incriminados como vectores de la Trypanosoma cruzi y T. rangeli.

A) Vista dorsal de la cabeza.B) Vista lateral de la cabeza.C) Vista lateral de la parte anteocular de la cabeza.D) Diseño de la parte ventral del abdomen.E) Esquema del fémur anterior.

A

B

D C

E

Figura 13. Panstrogylus geniculatus.




A) Vista dorsal de la cabeza.B) Pronoto.C) Escutelo.D) Vista lateral de la cabeza y parte anterior del tórax.

Figura 14. Panstrongylus herreri.

AB

CD




A) Vista lateral de la cabeza.B) Vista dorsal de la cabeza y el pronoto.C) Escutelo.D) Esquema del conexivo dorsal.

Figura 15. Panstrongylus chinai.

A

C

B

D




A) Vista dorsal de la cabeza.B) Esquema de la pata media.C) Vista lateral de la cabeza.

Figura 16. Triatoma infestans.

A B

C




A) Hembra: Cabeza y parte anterior del pronoto.B) Hembra: Vista lateral de la cabeza.C) Macho: Vista dorsal de la cabeza.D) Escutelo.

Figura 17. Triatoma carrioni.

A

B

C

D




A) Cabeza, pronoto y escutelo.B) Cabeza, vista lateral.

Figura 18. Rhodnius ecuadoriensis

A

D

B




A) Vista lateral de la cabeza.B) Cuello.C) Vista dorsal de la cabeza.D) Esquema del escutelo.

Figura 19. Rhodnius robustus.

A

B

C

D




Figura 20. Rhodnius pictipes.

B

C

A

A) Vista dorsal de la cabeza.B) Vista lateral de la cabeza.C) Antena.




A) Vista vertral.B) Vista lateral de la cabeza.C) Hemielitro.D) Vista dorsal de la cabeza.E) Escutelo.

Figura 21. Belminus peruvianus.

A

B

C

D

E


SE TERMINÓ DE IMPRIMIR

EN EL MES DE ENERO DE 2005,EN LOS TALLERES GRÁFICOS DEL

CENTRO DE PRODUCCIÓN EDITORIAL E IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS

JR. PARURO 119. LIMA 1. TELEFAX: 428-5210CORREO ELECTRÓNICO: [email protected]

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