83

DAFTAR PUSTAKA

Adams, M. R. 1997. Vinegar. Dalam: Wood, B. J.B. (eds). Microbiology of Fermented Food, Volume 1. Elsevier Applied Science Publishers Ltd. New York.

Away, Yunfal. 1989. Evaluasi Pengaruh Beberapa Marga Mikroorganisme pada

Proses Fermentasi Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Terhadap Mutu Citarasa dan Indeks Fermentasi. Tesis Pasca Sarjana Biologi. ITB. Bandung.

Backer, C. A. & R. C. B. Van der Brink Jr. 1968. Flora of Java. Wolters-

Moondhoff N. V. Gronigen. Camargo, R., J. Leme Jr., and A. M. Filho. 1963. General Observation on the

Microflora of Fermenting Cocoa Beans in Bahia. Food Tech. 17: 1328-1330 Chaerul, M. 2001. Kinetika Penyisihan Organik Konsentrasi Tinggi pada

Sequencing Batch Reaktor Anaerob Tahap Methanogenesa dengan Parameter Rasio Waktu Pengisian terhadap Waktu Reaksi. Tesis Magister Teknik Lingkungan ITB. Bandung.

Chatt, E. M. 1953. Cocoa Cultivation, Processing Analysis. Interscienci. New

York. Cook, A.H. 1958. The Chemistry and Biology of Yeasts. Academic Press Inc. New

York. De Witt, K. W. 1957. Nitrogen Metabolism in Fermenting Cacao. Rep Cacao Res.

Trinidad. p: 54-57 Departeman Kesehatan. 2000. Farmakope Indonesia. Depertemen Kesehatan

Republik Indonesia. Direktorat Jenderal Perkebunan (Ditjenbun). 2006. Road Map Kakao 2005-2025.

Departemen Pertanian. Jakarta. Effendi, S. 1982. Pengaruh Kondisi Pengolahan terhadap Mutu Biji Cokelat di

Perkebunan Bunisari. Fakultas Pasca Sarjana. IPB. Bogor. Fardiaz, S. 1992. Mikrobiologi Pangan I. PT. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

Forsyth, W. G. C. 1555. Cacao Polyphenolic Substances III, Separation, and Estimation on Paper Cromatograms.Biochem.

84

Frazier, W.C. 1958. Food Microbiology 2nd ed. Tata McGrow Hill Publishing Company Ltd, New Delhi.

Frazier, C. W.& D. C. Westhoff. 1988. Food Microbiology. 4th ed. McGraw-Hill,

Inc. New York. Ginting, S. P. Tantangan dan Peluang Pemanfaatan Pakan Lokal untuk

Pengembangan Peternakan Kambing di Indonesia. Lokakarya Nasional Kambing Potong. Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan. http://peternakan.litbang.deptan.go.id.

Grady, C. P. dan Lim, Henry, C. 1980. Biological Wastewater Treatment, Theory,

and Application. Mercel Dekker Inc. New York. Griffiths, L. A. 1960. The Significance of Current Research on Cacao

Fermentation Production. XIII Inter American Cacao Conferention. Trinidad & Tobago. pp: 56-64.

Guritno, P. dan B. Hardjosuwito. 1983. Pengaruh Suhu Pengeringan Biji Cokelat

(Theobroma cacao L.) Terhadap Keasaman dan Kadar Lemak serta Asam Amino. Kumpulan Majalah Konperensi Cokelat Nasional II. 13-15 Oktober. Medan.

Hardjosuwito, B. 1983. Mesin Cuci Cokelat Vertikal. Menara Perkebunan. 51 (5):

137-140. Bogor. Hariyum, A. 1986. Pembuatan Protein Sel Tunggal. PT. Waca Utama Pramesti,

Jakarta.

Irdawati. 1999. Produksi Asam Asetat dari Hidrolisat Ubi Kayu (Manihot esculenta Crantz) oleh Kultur Campuran Saccharomyces cerevisiae Hanson Strain A3 dan Acetobacter aceti Beijerinck Strain ITB X24 secara Fermentasi Bawah Permukaan. Tesis Magister Biologi ITB. Bandung.

Jacobs, M. B. 1951. The Chemistry and Technology of Food Product. 2nd ed. vol

II. Interscience Publishers Inc. New York. Jacobs, M. B. 1958. The Chemical Analysis of Food and Food Products. vol I. 3rd

ed. D. Van. Nostrand Co. Inc. New York. Johnson, E. A., Zeikus, J. G. 1991. Mixed Cultures in Biotechnology.

Environmental Biotechnology. McGraw-Hill, Inc. USA. Kamaruddin, Ramli dan Sudirman, A. N. I. 2006. Pemanfaatan Limbah Cairan

Pulp Hasil Fermentasi Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Sebagai Bahan Baku Pembuatan Cuka. Badan Penelitian dan Pengembangan Daerah.Sulawesi Selatan. www.litbangda-sulsel.go.id.htm.

85

Knapp, A. W. 1937. Cacao Fermentation. John Bale. London. Luthfiantho, A. 1995. Pengaruh Beberapa Konsentrasi Sukrosa dalam

Fermentasi Cuka dari Limbah Kulit Nanas. Skripsi Biologi UI. Depok. Manurung, Z. M., A. Huyaranda, dan Muhajir. 1976. Pengeruh Penutup dan

Lubang Peti Mini pada Fermentasi Cokelat. Menara Perkebunan. Bogor. 44 (6): 319-322

Martelli, H. L. & H. F. K. Dittmar. 1960. Yeast Isolated from Cacao Beans during

the Curing Process. Cacao Fermentation. Escola N. de Quίmica. University of Brazil. Rio de Janeiro. Brazil. 9: 370-371. http://www.worldagroforestry.org

McComber, K., Jennifer, R., Janet, F., Dalya, Kent., & Jialan Wang. 2007.

Chocolate Testing. GSC HCA off-campus comitee. MIT. http://bostonchocolateguide.

Metcalf & Eddy. 1991. Wastewater Engineering: Treatment, Disposal and Reuse,

McGraw Hill Book and Co. Singapura Minifie, B. W. 1980. Chocolate, Cocoa and Confectionery. Science and

Technology, 2nd ed. The AVI Publ. Co. Inc. Westport. Nasution, Z., W. Ciptadi, dan B. S. Laksmi. 1976. Pengolahan Cokelat. Dep.

THP. Fateta. IPB. Bogor. Nurhidayat. 1984. Pengaruh Aerasi pada Proses Fermentasi Biji Cokelat

Terhadap Mutu Biji Cokelat Kering. Tesis Sarjana IPB. Fakultas Teknik Pertanian. Bogor.

Pelczar, M.J dan Chan, E.C.S. 1986. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Penerbit

Universitas Indonesia (UI-Press). Jakarta. Phoebe, A. Chocolate: Food of The Gods. William Randolf Hearst Foundation.

Hearts Museum Antrophology. http:// heartsmuseum.berkeley.edu Poultney, S.V. 1949. Vinegar Products. Chapman & Hall Ltd. London.

Prameswari, E. A. 2004. Optimasi Produksi Vinegar dari Limbah Cair Pulp Kakao (Theobroma cacao L.) menggunakan Ragi Saccharomyces cerevisiae dan Bakteri Acetobacter aceti dangan Metode “Quick Process”. ITB, Bandung

Prescott. S. C. & C. G. Dunn. 1959. Industrial Microbiology. McGraw Hill Book

Company Inc. New York.

86

Quesnel, V. C. 1967. Fermentation and Drying of Cacao. Lective Delivered to The Agricultural Society of Trinidad.

Rahayu, Donor. 1986. Pengkajian Metoda Fermentasi Biji Cokelat (Theobroma

cacao L.)Klon UAH dengan Menggunakan Biakan Murni Saccharomyces cerevisiae ITB A3 dan Acetobacter aceti ITB X24. Dep. Boilogi. ITB. Bandung.

Reineccius, G. A. , D. A. Andersen, T. E. Kavanagh, dan P. G. Keeney. 1972.

Identification and Quantification of Free Sugars in Cocoa Beans. J. Agriculture Food Chem. 20: 199-202.

Roelofsen, P. A. 1958. Fermentation, Drying and Storage of Cocoa Beans. Avd.

Food Res. 8:225-229 Rohan, T. A. 1963. Processing of Raw Cocoa for The Market. Food and

Agricultural Organization of The United Nation. Rome. Rohan, T. A. dan T. Stewart 1967. The Precursors of Chocolate Aroma:

Production of Free Amino Acids During Fermentation of Cocoa Beans. Journal Food Science. 32: 392-398.

Salle, A. J. 1961. Fundamental Principles of Bacteriology. McGraw Hill

Company Inc. New York. Schonberg, A. dan R. Moubasher. 1952. The Stecker Degradation of α Amino

Acids. Chem. Revs.50: 267-269. Siagian, Albiner. 2002. Bahan Tambahan Makanan. Fakultas Kesehatan

Masyarakat. USU. Library usu2.ac.id. Siregar, I. M. 1964. Catatan Mengenai Cokelat. MenaraPerkebunan 33 (3) : 55-65 Siregar, T. H. S., S. Riyadi dan L. Nuraeni. 1992. Budidaya Pengolahan dan

Pemasaran Cokelat. Penebar Swadaya. Jakarta. Smith, N. J. H. 2005. Geography of Crop Plants. Lecture Notes. Department of

Geography. University of Florida. Gainesville. Florida. www.geog.ufl.edu Soetiardjo dan S. Mangoensoekardjo. 1980. Pengaruh Fermentasi dan

Pengeringan Terhadap Kualitas Biji Cokelat Bulk. Kumpulan Makalah Konperensi Cokelat Nasional. vol II 16-18 Sept. Medan.

Speece, R. E. 1996. Anaerobic Biotechnology for Industrial Wastewaters. Archae

Press. Tennesse. USA. Suriawiria, U. 1986. Pengantar Mikrobiologi Umum. Penerbit Angkasa Bandung.

87

Syafila, M. 1997. Proses Anaerob dalam Pengolahan Buangan Industri. ITB. Bandung.

Tampubolon, M. 1984. Pengaruh Penambahan Ragi Terhadap Fermentasi dan

Mutu Biji Kering Cokelat Bulk. Pusat Penelitian dan Pengembangan Perkebunan. Tanjung Muara.

Taufik, S. 1996. Produksi Senyawa Aroma dari Lendir Biji Kakao oleh

Trichoderma sp. pada variasi Waktu Fermentasi, pH dan Kecepatan Pengadukan. Fakultas teknologi Pertanian. IPB. Bogor

Tri Panji, S. Effendi, R.S. Hadioetomo, D. Hadijaya, D. Mangunwijaya. 1995.

Some Aromas Produced by Trichoderma spp. and Possible Production of Assosiated Flavoring Agent Using Cocoa Sweatings. Menara Perkebunan. 63 (1): 27-32.

Waluyo, S. 1984. Beberapa Aspek Tentang Pengolahan Vinegar. Dewaruci Press.

Jakarta.

Wang, D. I., C. L. Cooney, A. L. Demain, P. Dunhil, A. E. Humprey,& Malcom D. L. 1979. Fermentation and Enzyme Technology. John Willey and Sons, Inc. New York.

Widiata, I. G. M. 2006. Mendongkrak Pendapatan Petani dengan Sentuhan

Teknologi Maju. Sinar Tani. http://www.litbang.deptan.go.id. http://www.agribisnis.net http://www.icco.org http://www.kadin-indonesia.or http://en.wikipedia.org.htm

88

Lampiran A Data Hasil Penelitian Percobaan I

Tabel A-1. Reaktor A (tanpa flushing gas nitrogen)

Tabel A-2. Komposisi Gas Reaktor

Reaktor Hari ke- CO2 N2 O2 H2 Total (%)

A 0 28,4321 57,3702 14,1975 0 99,9998 3 5,1778 81,4188 13,4032 0 99,9998 7 2,335 87,6737 9,9904 0 99,9991 12 0,9813 88,4671 10,5515 0 99,9999 20 0,9984 89,3782 9,6232 0 99,9998

B 0 10,7160 85,2592 4,0246 0 99,9998 7 32,1748 65,5959 2,2291 0 99,9998 12 7,6417 87,1641 5,1901 0,0039 99,9998 20 11,3639 85,8451 2,7908 0 99,9998

Hari ke-

VSS (mg/L)

COD (mg/L)

Alkohol (mg/L)

TAV (mg/L)

Asetat (mg/L) pH

Turbiditas (%)

0 2.006,25 130.769,23 1.704,46 12.248,46 11.489,36 3,83 1.8501 4.410,42 107.692,31 12.732,14 12.426,33 11.773,05 3,82 1.6002 4.234,00 93.589,74 16.017,86 12.964,02 11.773,05 3,81 2.7503 2.394,00 78.431,37 18.892,86 12.637,89 11.914,89 3,81 2.0004 2.202,00 75.163,40 21.562,50 12.982,68 11.914,89 3,81 1.6255 2.566,00 74.727,67 20.125,00 12.364,02 12.056,74 3,79 1.9506 1.656,00 77.342,05 17.660,71 14.169,51 13.191,49 3,76 1.5007 2.192,00 77.342,05 16.223,21 15.641,16 13.333,33 3,76 1.6508 1.842,00 76.252,72 16.428,57 18.896,73 14.751,77 3,75 1.0509 1.374,00 74.074,07 13.964,29 18.758,19 15.319,15 3,73 75010 1.540,00 64.270,15 13.348,21 21.556,08 16.879,43 3,73 75011 1.486,00 71.895,42 10.678,57 22.328,61 17.659,57 3,73 75012 730,00 66.448,80 11.910,71 22.746,42 17.872,34 3,73 48013 686,00 67.538,13 10.883,93 24.964,68 20.141,84 3,74 54014 1.004,00 58.823,53 9.651,79 27.647,31 20.851,06 3,73 90015 924,00 62.091,50 8.214,29 27.076,92 21.631,21 3,73 37516 760,00 64.270,15 8.625,00 30.346,98 22.411,35 3,72 51017 946,00 68.300,65 8.625,00 30.967,86 23.546,10 3,72 52518 738,00 66.993,46 8.830,36 32.168,73 25.106,38 3,69 52520 810,00 62.745,10 9.241,07 33.311,97 27.517,73 3,67 495

89

Tabel A-3. Reaktor B (flushing gas nitrogen 10 menit) Hari ke-

VSS (mg/L)

COD (mg/L)

Alkohol (mg/L)

TAV (mg/L)

Asetat (mg/L) pH

Turbiditas (%)

0 2.020,83 130.769,23 1.663,39 14.691,93 11.631,21 3,84 1.7501 2.353,19 105.128,21 11.294,64 14.746,86 11.702,13 3,83 1.7002 2.320,00 100.000,00 19.098,21 14.976,45 11.914,89 3,82 2.0003 2.462,00 86.056,64 21.151,79 14.268,60 11.914,89 3,82 2.0004 1.910,00 81.699,35 21.973,21 15.225,72 11.914,89 3,82 1.3755 2.088,00 78.431,37 20.535,71 15.207,66 11.773,05 3,81 1.6506 1.504,00 80.610,02 21.357,14 15.410,88 11.773,05 3,81 1.2757 2.182,00 70.806,10 20.125,00 15.067,29 11.773,05 3,81 1.2758 1.444,00 84.967,32 20.741,07 15.516,36 12.624,11 3,80 1.1259 1.278,00 82.788,67 19.508,93 15.637,29 12.765,96 3,80 1.200

10 1.618,00 80.610,02 19.919,64 15.774,48 12.907,80 3,80 1.12511 1.586,00 81.699,35 19.508,93 15.561,84 13.475,18 3,79 1.27512 934,00 73.529,41 20.535,71 16.563,33 13.475,18 3,79 1.20013 918,00 77.342,05 18.071,43 16.865,70 13.829,79 3,78 90014 1.004,00 71.895,42 19.508,93 17.591,22 13.900,71 3,79 90015 1.222,00 78.431,37 18.482,14 17.107,05 13.900,71 3,78 90016 1.102,08 75.163,40 16.839,29 17.645,79 14.326,24 3,77 75017 1.112,00 65.359,48 16.017,86 17.826,42 14.751,77 3,77 1.10018 1.032,00 68.627,45 14.785,71 18.409,56 14.751,77 3,76 1.12520 1.030,00 68.627,45 14.375,00 18.465,48 15.035,46 3,75 1.125

90

Lampiran B Data Hasil Penelitian Percobaan II

Tabel B-1. Reaktor A (tanpa flushing gas nitrogen) Hari ke-

VSS (mg/L)

COD (mg/L)

Alkohol (mg/L)

TAV (mg/L)

Asetat (mg/L) pH

Turbiditas (%)

0 2.660,00 130.718,95 1.421,52 12.078,66 11.489,36 3,81 2.6401 2.570,37 123.093,68 9.857,14 13.264,02 11.347,52 3,84 2.7902 3.089,29 113.289,76 12.732,14 14.474,01 12.056,74 3,82 2.9553 3.142,86 111.111,11 15.401,79 15.738,42 13.475,18 3,82 3.3604 3.417,86 112.200,44 15.812,50 17.764,71 15.177,30 3,77 3.5705 3.442,86 108.932,46 16.839,29 18.396,45 16.028,37 3,73 3.9456 3.789,29 106.209,15 20.125,00 18.672,36 17.021,28 3,73 3.8557 4.300,00 105.392,16 17.866,07 20.352,30 17.304,96 3,72 3.6308 3.164,29 104.575,16 17.455,36 19.313,94 17.588,65 3,61 3.7809 3.009,09 99.128,54 14.785,71 20.764,68 18.965,03 3,59 5.400

10 3.359,09 93.681,92 11.294,64 22.840,71 19.300,70 3,58 4.88011 2.737,50 104.575,16 9.446,43 21.964,62 19.804,20 3,57 2.74512 3.058,33 104.575,16 10.473,21 22.280,58 20.139,86 3,57 2.48013 2.679,17 101.307,19 10.678,57 22.674,39 20.643,36 3,57 2.58014 2.262,50 100.217,86 9.241,07 21.977,64 20.811,19 3,56 2.36015 2.100,00 98.039,22 7.392,86 22.691,37 21.146,85 3,55 2.38016 2.218,18 98.039,22 6.571,43 21.739,59 21.146,85 3,54 2.30017 2.118,18 98.039,22 7.187,50 22.315,35 21.146,85 3,54 2.32018 2.263,64 95.860,57 5.750,00 22.956,99 21.314,69 3,55 2.26019 2.281,82 84.967,32 4.517,86 23.377,41 21.482,52 3,54 2.18020 1.681,82 81.699,35 4.415,18 23.529,21 21.482,52 3,53 2.100

Tabel B-2. Komposisi Gas Reaktor

Reaktor Hari ke- CO2 N2 O2 H2 Total

A 0 0 73,1770 20,0265 0 93,2035 6 17,1957 65,2768 17,5274 0 99,9999 11 37,5342 60,7071 1,4594 0,0063 99,7069 15 22,3572 76,3601 1,2612 0,0214 99,9999 20 22,1378 76,8411 1,0162 0,0047 99,9998 B 0 0 93,4571 6,5428 0 99,9999 6 0,8513 98,5898 0,5589 0 99,9999 15 0 99,6991 0,3008 0 99,9999 20 0 99,5674 0,4325 0 99,9999

91

Tabel B-3. Reaktor B (flushing gas nitrogen terus-menerus) Hari ke-

VSS (mg/L)

COD (mg/L)

Alkohol (mg/L)

TAV (mg/L)

Asetat (mg/L) pH

Turbiditas (%)

0 2616,00 130718,95 1382,27 14778,48 11205,67 3,81 17401 2546,43 128540,31 7803,57 15076,86 11347,52 3,85 28502 2082,14 117647,06 10678,57 16569,36 11631,21 3,84 29253 3538,46 115468,41 14991,07 16864,68 12765,96 3,84 34954 3339,29 114379,08 17455,36 17143,17 14893,62 3,75 36305 3257,14 114379,08 16017,86 17085,33 15744,68 3,72 39606 3807,14 106753,81 14375,00 17798,46 16737,59 3,7 44107 4075,00 119825,71 15812,50 19044,75 17021,28 3,68 40808 3253,57 101307,19 14785,71 20586,36 17588,65 3,57 29409 3027,27 101307,19 11705,36 20047,08 19132,87 3,54 3150

10 2513,64 99128,54 11705,36 21558,24 19300,70 3,54 278011 2712,50 98039,22 10678,57 22037,19 19804,20 3,53 295512 3259,09 106209,15 10678,57 22572,30 20307,69 3,53 266013 2050,00 93137,25 9035,71 21760,41 20979,02 3,53 242014 2500,00 75163,40 6982,14 22277,55 21146,85 3,51 252015 2245,00 81699,35 7803,57 22753,14 21146,85 3,51 204016 1331,82 87145,97 4723,21 23235,69 21314,69 3,5 170017 2118,18 88235,29 5544,64 22864,71 21314,69 3,5 232018 2527,27 91503,27 4517,86 23337,42 21482,52 3,49 252019 2145,45 71895,42 4107,14 24639,57 21650,35 3,48 210020 1472,73 75163,40 4107,14 23620,02 21650,35 3,48 1960

92

Lampiran C Pemeriksaan Chemical Oxygen Demand (COD)

C-1. Metode

Titrasi COD kromat

C-2. Prinsip

Pada umumnya materi organik akan teroksidasi oleh larutan kromat dan

asam sulfat yang mendidih. Sampel akan distabilkan pada larutan asam kuat

dan kalium dikromat berlebih. Setelah penguraian kalium dikromat yang

tersisa akan dititrasi dengan ferro aluminium sulfat (FAS) untuk menentukan

jumlah kalium dikromat yang bereaksi dan materi organik yang teroksidasi

akan dikalkulasi dalam bentuk ekivalensi oksigen. Waktu stabilisasi selama

2 jam namun dapat dikurangi jika dalam periode yang lebih pendek

diperoleh hasil yang tetap sama.

C-3. Pereaksi

C-3.1. Larutan standard kalium dikromat 0,25 N

K2Cr2O7 yang telah dikeringkan pada suhu 103° C selama 2 jam

ditambahkan sebanyak 4,193 gram pada 500 mL air destilasi. Kemudian

ditambahkan 167 mL H2SO4 pekat dan 33,3 gram HgSO4, dilarutkan dan

didinginkan sampai tempertur kamar kemudian diencerkan sampai 1000 mL.

C-3.2. Pereaksi asam sulfat

Ag2SO4 (padat atau reagen, kristal atau bubuk) ditambahkan pada H2SO4

pekat dengan perbandingan 5,5 gram Ag2SO4 per kg H2SO4. Biarkan

selama 1 – 2 hari untuk melarutkan Ag2SO4.

C-3.3. Larutan indikator feroin

1,10 phenantrolin monohodrat sebanyak 1,485 gram dan 695 gram

FeSO4.H2O dilarutkan dalam akuades. Kemudian ditambahkan 20 mL

H2SO4 pekat dan didinginkan lalu diencerkan hingga volumenya 1000 mL.

Larutan ini harus distandardisasi setiap hari dengan cara:

Akuades sebanyak 2,5 mL, 3,5 mL H2SO4 pekat dan 1,5 kalium dikromat

dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 125 mL. Didinginkan pada temperatur

93

kamar kemudian ditambahkan 0,05-0,1 mL (1-2 tetes) indikator ferroin dan

dititrasi dengan larutan FAS.

Molaritas FAS = (mL K2Cr2O7 x 0,1) / mL FAS

C-4. Cara Kerja

Untuk menghindari kontaminasi pada penggunaan pertama kali, tabung

COD dicuci dan direndam dalam H2SO4 20%.

Pengukuran dilakukan dengan memasukkan 2 mL sampel, 2 mL kalium

dikromat dan 3 mL asam sulfat ke dalam tabung COD, ditutup rapat,

kemudian dikocok sampai tercampur sempurna. Blanko juga dibuat dengan

menggunakan akuades sebagai pengganti sampel.

Tabung dipanaskan pada temperatut pemanas 150° C selama 2 jam

kemudian didinginkan dalam suhu kamar. Setelah dingin dimasukkan ke

dalam Erlenmeyer 125 mL, ditambahkan indikator ferroin 1-2 tetes dan

dititrasi dengan FAS 0,1 N. Titik akhir titrasi adalah perubahan warna dari

biru kehijauan menjadi merah kecoklatan.

C-5. Perhitungan

COD (mg O2/L) = (A – B) x N x w Eq O2 x 1000 x P, dimana:

A = mL FAS yang digunakan dalam titrasi blanko

B = mL FAS yang digunakan dalam titrasi sampel

N = normalitas FAS

w = 8

P = faktor pengenceran

94

Lampiran D Pemeriksaan Volatile Suspended Solid (VSS)

D-1. Metode

Analisis berdasarkan penimbangan berat (gravimetri)

D-2. Prinsip

Residu dari penyaringan sampel dikeringkan dengan oven pada suhu 103 -

105° C sampai mencapai berat konstan. Perbedaan berat antara cawan pijar

kosong dengan cawan berisi padatan menunjukkan jumlah total suspended

solid (padatan tersuspensi). Kemudian residu pada cawan dipanaskan pada

550 ± 50° C. Perbedaan berat sebelum dan sesudah pemanasanmenunjukkan

ju,lah padatan tersuspensi volatil (VSS). Penentuan VSS akan memberikan

perkiraan kasar jumlah materi organik yang terkandung di dalam limbah

atau air buangan.

D-3. Cara Kerja

Sampel disaring dengan kertas saring bebas abu (ashless) yang telah

ditimbang terlebih dahulu (wks). Kertas saring yang mengandung endapan

disimpan dalam cawan yang telah ditimbang (wcw), dikeringkan pada suhu

103 - 105° C selama 1 jam kemudian didinginkan dalam desikator sampai

temperatur dan beratnya stabil. Cawan berisi endapan ditimbang (wA mg)

lalu dipanaskan pada 550 ± 50° C selama 1 jam lalu didinginkan dalam

desikator dan ditimbang beratnya (wB mg)

D-4. Perhitungan

VSS (mg/L) = ((wA - wB) - wks ) x 1000 / volume sampel

95

Lampiran E Pemeriksaan Kadar Alkohol

E-1. Metode

specific gravity (Howrits et al., 1975)

E-2. Prinsip

Penentuan kadar alkohol dilakukan dengan membandingkan berat jenis

alkohol dalam sampel dengan berat jenis akuades.

E-3. Cara Kerja

Sampel yang mengandung etanol kurang dari 30 %, dapat dilakukan dengan

cara memipet 25 mL larutan sampel ke dalam labu destilasi sambil diatur

suhunya sekitar 25° C. Kemudian ditambahkan akuades sebanyak kurang

lebih 25 mL, dan didestilasi sampai diperoleh destilat yang 2 mL kurangnya

dari volume sampel. Hasil destilasi didinginkan sampai suhu 20° C, lalu

dimasukkan ke dalam piknometer 10 mL. Penimbangan dilakukan pada

suhu yang sama denganpemipetan yaitu pada 25° C. Berat jenis alkohol

dihitung kemudian kadar etanol dalam satuan % v/v ditentukan dengan

menggunakan daftar bobot jenis dan kadar etanol.

E-4. Perhitungan

BJ alkohol = (Berat piknometer + destilat) – berat piknometer kosong (Berat piknometer + akuades) – berat piknometer kosong

96

Lampiran F Pemeriksaan Total Asam Volatil (TAV)

F-1. Metode

Destilasi dan titrasi

F-2. Cara Kerja

Sampel sebanyak 200 mL disentrifugasi selama 5 menit (volume sampel

lebih kecil dapat digunakan dengan penambahan akuades sampai 100 mL).

Supernatan yang diperoleh diambil sebanyak 100 mL, dimasukkan ke dalam

labu destilasi 500 mL, ditambahkan 100 mL akuades dan 5 mL H2SO4 pekat

kemudian diaduk dengan hati-hati. Kemudian destilasi dengan kecepatan 5

mL/menit, batu didih dapat ditambahkan agar panasnya merata. Destilat

pertama sebanyak 15 mL dibuang, destilat selanjutnya ditampung secara

tepat sebanyak 150 mL kemudian ditambahkan indikator phenantrolin dan

dititrasi dengan NaOH 0,1 N sampai berwarna merah muda. Jika

menggunakan pH meter dititrasi sampai nilai pH berkisar 8,3.

F-3. Perhitungan

F-3.1. Faktor Koreksi (f)

Sejumlah H2COOH stok dilarutkan dalam labu ukur dengan akuades hingga

volumenya menjadi 250 mL, konsentrasi larutan dicatat (misal B) kemudian

didestilasi. Destilat pertama sebanyak 15 mL dibuang untuk menghilangkan

pengaruh CO2 dan H2S, destilat selanjutnya ditmpung hingga 150 mL

kemudian dititrasi dengan NaOH 0,1 N, konsentrasi larutan dicatat (misal

A). Faktor koreksi dapat dihitung dengan persamaan: f = A/B

F-3.2. TAV sebagai asam asetat

TAV = (mL NaOH x N x 60000) / (mL sampel x f)

97

Lampiran G Pemeriksaan Kadar Asam Asetat

G-1. Metode

Titrasi asam-basa Cox dan Pearson

G-2. Prinsip

Metode titrasi ini sebenarnya dilakukan untuk mengukur kadar asam total

dalam sampel, namun karena pada vinegar asam asetat merupakan produk

yang dominan sehingga kadarnya paling tinggi, maka total asam dalam

sampel dianggap sebagai total asam asetat

G-3. Cara Kerja

Pengukuran kadar asam asetat ini dilakukan dengan mentitrasi 10 mL

sampel yang telah diencerkan dengan akuades sampai volume 100 mL

dengan NaOH 0,1 N. Sebagai indikator digunakan indikator Tashiro

sebanyak 5 tetes sehingga warna larutan menjadi keunguan. Kemudian

dititrasi hingga warnanya berubah menjadi kehijauan dan diukur volume

NaOH yang digunakan.

G-4. Perhitungan

% HOAc = N NaOH x Volume NaOH x BM HOAc x 100 % 1000 x mL sampel

keterangan: HOAc = asam asetat, N NaOH = normalitas NaOH,

Berat Molekul (BM) HOAc = 60

98

Lampiran H Skema Pengolahan Buah Kakao Menjadi Biji

Kakao Kering

1. Pemanenan & Pengupasan 2. Fermentasi

4. Pengeringan

5. SortasiBiji Kakao Kering

- Kulit Buah (cocoa pod) - Pulp Kakao (cocoa

Pulp Kakao (cocoa

3. Perendaman dan

Pencucian

Air sisa proses perendaman &

99

Lampiran I Dokumentasi Peralatan yang Digunakan I-1. Reaktor yang Digunakan

I-2. Peralatan untuk pemeriksaan COD

COD Reaktor

I-3. Peralatan untuk pemeriksaan VSS

100

Sentrifugator Furnace

Timbangan Analitik Desikator

101

Oven

I-4. Peralatan untuk Pemeriksaan TAV dan Kadar Alkohol

Destilator

102

Lampiran J Metabolisme Mikroorganisme J-1. Jalur Degradasi Glukosa Embden Meyerhof Parnas (EMP)

sumber: http://de.wikimedia.org.png

103

J-2. Jalur Pembentukan Asetat dari Glukosa

sumber: http://www.biochemj.org

104

J-3. Jalur Pembentukan Asetat dari Etanol secara Aerob

sumber:Gotschalk, 1986

sumber:http://dwb.unl

105

J-4. Jalur Pembentukan Asetat dari Butirat

sumber:Gotschalk, 1986

106

J-5. Jalur Pembentukan Asetat dari Laktat dan Propionat

sumber:Gotschalk, 1986

107

J-6. Jalur Pembentukan Etanol

sumber: http://www.textbookofbanteriology.net.

108

J-7. Pembentukan Laktat

sumber: http://biotech.szeged.hu

109

Lampiran K Beberapa Hasil Pengukuran Komposisi Gas dengan Gas Cromatography (GC)

K-1. Reaktor A Percobaan I pada t0

K-2. Reaktor B Percobaan I pada t0

110

K-3. Reaktor A Percobaan I pada t20

K-4. Reaktor B Percobaan I pada t20

111

K-5. Reaktor A Percobaan II pada t20

K-6. Reaktor B Percobaan II pada t20